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        花櫚木種子際促生真菌的分離篩選及鑒定

        2021-12-07 02:28:14王婷婷韋小麗
        西北林學院學報 2021年6期
        關(guān)鍵詞:功能

        王婷婷,韋小麗

        (1.貴州大學 林學院,貴州 貴陽 550025;2.貴州省林業(yè)學校,貴州 修文 550210)

        “種子際”是一個短暫、迅速變化、微生物動態(tài)的土壤帶,是距離種子1~10 mm受種子萌發(fā)影響的土壤。種子際微生物是種子落地后接觸到的最原始微生物群落。目前大量研究證實了植物種子表面蘊藏著多種微生物群落[1],但其中大部分研究主要針對農(nóng)作物種子進行,分離出的種子際微生物主要有細菌(芽孢桿菌、伯克霍爾德氏菌、微桿菌、短小桿、菌泛菌、假單胞菌等)、真菌(木霉屬、鐮刀菌屬)、放線菌[2-3],而對林木種子際真菌研究鮮有報道。

        花櫚木(Ormosiahenryi)屬蝶形花科紅豆屬,為國家Ⅱ級重點保護植物。其木材是高檔家具、雕刻和珍貴裝飾品的用材?;澳緲湫蚊烙^,種子鮮紅美麗,是優(yōu)良的園林綠化樹種,且其根、根皮、莖及葉均可藥用,經(jīng)濟價值較高[4]。前人對花櫚木種子多樣性及萌發(fā)特性[5-6]、根瘤菌多樣性[7],育苗技術(shù)[8-11]、繁殖生態(tài)學特征[12]進行了研究,對種子際真菌分離的研究未有報道。

        花櫚木硬實種子比例高,在進行花櫚木育苗時,通常采用高溫浸種使種皮吸脹或機械損傷種皮再浸種催芽,這一方面使種子產(chǎn)生吸脹損傷,另一方面操作不便。在自然環(huán)境中,我們發(fā)現(xiàn)在環(huán)境條件好的地方花櫚木能更新萌發(fā),但自然環(huán)境中卻沒有高溫處理,這可能是微生物及環(huán)境共同作用的結(jié)果。因此本研究擬以貴州晴隆、關(guān)嶺、三穗3個地方采集花櫚木種子際土壤為研究對象,參考根際微生物研究方法[13],對種子際真菌進行分離、純化,篩選同時具有溶磷、解鉀、固氮、產(chǎn)IAA促生功能的真菌。通過生物學鑒定,確定促生真菌的種類,為花櫚木種子際微生物多樣性研究奠定基礎(chǔ),為促進花櫚木種子萌發(fā)、幼苗生長研究提供具有促生功能的菌株。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料

        在貴州晴隆縣、三穗縣、關(guān)嶺縣3處野生花櫚木群落采集距花櫚木種子表面1~10 mm土壤。采集方法是:將林下的花櫚木種子和包裹花櫚木種子1~10 mm的土壤一起采集,帶回實驗室再將種子際土壤進行分離。由于種子際土壤微生物是一個動態(tài)變化的,因此本研究將種子附著微生物動態(tài)過程分為5類,且各類型種子獨立存在,無包含關(guān)系,各類型的特征如下(圖1):

        圖1 分離種子際微生物的5種種子類型

        第1類種子(a):該類種子來自土層厚度0~1 cm土壤,該類種子顏色鮮艷、較少土壤附著在種子表面、種臍清晰新鮮。代表最初接觸地面的一類種子,表面附著的土壤可作為最初接觸的微生物分離。

        第2類種子(b):花櫚木種子來自于2~5 cm土壤。該類種子顏色紅色、無光澤、附著的土壤較多、種臍不明顯;這類種子在土壤中埋藏時間較久,種子際微生物是種子貯藏在土壤中時接觸的微生物,可作為種子在萌發(fā)前所接觸的土壤微生物分離。

        第3類種子(c):附著菌絲的花櫚木種子,是從5~20 cm土壤深處找到的比較特殊的一類種子,其特征是種子未發(fā)芽但種子表面包裹著1層菌絲,土壤附著在表面。

        第4類種子(d):是從5~20 cm土壤中找到的已經(jīng)吸脹的花櫚木種子,種子呈黑紅色、種子吸脹變大、有的種皮破裂,其種子際土壤用來種子分離吸脹階段種子所共生的土壤微生物。

        第5類種子(e):已經(jīng)萌發(fā)露出胚根和胚芽的花櫚木種子,從5~20 cm土層中采集,是已經(jīng)完成萌發(fā)的花櫚木種子,該類種子特點是:胚根胚芽已經(jīng)長出,胚乳明顯可見,子葉未展開,種皮完全消失。其種子際土壤用來分離種子萌發(fā)后所共生的土壤微生物。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 種子際土壤真菌的分離純化 采用稀釋涂布平板法[14],取0.5 g種子際土壤制成懸濁液,各類型種子際土壤取3個樣本;分別稀釋至10-1、10-2、10-3,各梯度重復3個,涂布在直徑9 cm培養(yǎng)皿中,采用PDA固體培養(yǎng)基。從培養(yǎng)種子際土壤微生物的培養(yǎng)基中,將生長出的菌絲再次分離至新的PDA固體培養(yǎng)基中,不斷分離直到獲得純的菌落為止。

        1.2.2 真菌的功能篩選 固氮能力篩選:用打孔器從純化好的真菌培養(yǎng)基上取0.5 cm大小的菌餅,再接種至阿須貝氏固體培養(yǎng)基[15],每個菌種3個重復,每個重復接種3個菌餅置于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h,觀察菌絲生長情況,初步判定出待測菌株是否具有固氮功能;能生長的菌種說明具有固氮作用,不能生長的則不具備固氮功能。

        溶磷能力篩選,用打孔器在純化好的真菌培養(yǎng)基取0.5 cm大小的菌餅,再接種至無機磷培養(yǎng)基[15],每個菌種3個重復,每個重復接種3個菌餅置于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h,根據(jù)溶磷圈直徑(HD)與菌圈直徑(CD)的比值大小來初步判定溶磷能力的強弱;HD/CD值越大說明溶磷功能越強,值越小說明溶磷功能越弱。

        解鉀能力篩選,用打孔器在純化好的真菌培養(yǎng)基上取0.5 cm大小的菌餅,再接種至PDA固體培養(yǎng)基上進行活化,具體操作是在PDA培養(yǎng)基一側(cè)均勻撒上少量的鉀長石粉粉末,另一側(cè)則接種真菌,每種菌做3個重復,每個重復接種3個菌餅置于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h。以菌絲的生長方向、生長速度、菌落形態(tài)等指標初步判定菌種的解鉀能力,菌絲能在鉀長石粉趨向生長說明具有解鉀能力,不能向鉀長石粉擴散生長則說明無解鉀能力。

        產(chǎn)IAA能力篩選,選用Salkowski法,用打孔器將純化好的真菌制成0.5 cm大小的菌餅,將5個菌餅接種至含有L-色氨酸(200 mg/mL)的金氏培養(yǎng)基(King’s)培養(yǎng)中,每個菌種做3個重復,每個重復接種3個菌餅置于30℃、180 r/min搖床中培養(yǎng)5 d;結(jié)束后取菌懸液2 mL,8000 r/min離心10 min,取上清液于試管中,加入等體積的Salkowski比色液,避光靜置30 min使其顯色,顏色變紅后說明菌種具有產(chǎn)IAA功能,配制3-吲哚乙酸標準液,在530 nm波段下測定吸光度,制作標準曲線,得方差y=47.96x-5.401 8(R2=0.956 9),根據(jù)公式計算得出IAA(MG/L)的值[15]。

        1.2.3 促生菌的鑒定 生物學鑒定:分離純化后的菌株用真菌基因組DNA提取試劑盒(Biomiga)提取DNA,PCR擴增采用引物ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)[17],擴增菌株核糖體DNA內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔序列(internal transcribed spacer,ITS)。將PCR擴增純化后的產(chǎn)物委托重慶擎科興業(yè)生物技術(shù)有限公司測序,鑒定出種子際中具有促生功能的菌種。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 真菌的分離純化結(jié)果

        通過對貴州晴隆、三穗、關(guān)嶺3個地點的種子際真菌的分離純化,最終得出了16株真菌(表1)。種子際真菌中有7株真菌來自關(guān)嶺、5株真菌來自晴隆、4株真菌來自三穗,其中2株來自于上述的第3類種子際土壤,9株來自第4類種子際土壤、5株來自第5類種子際土壤。

        表1 真菌的分離純化結(jié)果

        2.2 真菌的功能篩選

        對已分離純化的16種菌株進行促生功能篩選,結(jié)果表明(表2):12株真菌具有解鉀功能,13株真菌具有固氮功能,10株真菌具有溶磷功能,HD/CD(溶磷圈與菌圈的比值)排名前3的菌種是GL-4-1(1.9 mm)、SS-1-3(1.5 mm)、SS-2-3(1.38 mm);10株真菌具有產(chǎn)IAA功能,產(chǎn)IAA能力排名前3的菌種是SS-1-3(25.644)、GL-3-1(12.423)、QL-3-5(12.407)。GL-1-1、QL-3-1的IAA值比不接菌的空白菌液測定值低,故不作為具備產(chǎn)IAA功能的真菌。選擇同時具有解鉀、固氮、溶磷、產(chǎn)IAA功能的菌種作為回接菌種,故選定了6種真菌,分別為QL-3-5、GL-3-1、GL-4-1、SS-1-3、SS-1-6、SS-2-3,待回接真菌的溶磷圈見圖2。

        表2 種子際真菌的促生功能篩選

        圖2 用于回接的真菌的溶磷圈

        2.3 真菌的鑒定結(jié)果

        根據(jù)PCR擴增的700 bp片段長度的菌株DNA基因序列,參考李發(fā)虎等[16]研究方法對6種菌種基因序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖3),結(jié)合形態(tài)學鑒定對6種真菌進行鑒定。結(jié)果表明,種子際微生物SS-1-6為青霉屬Penicilliumsp.、SS-2-3為擬康寧木霉Trichodermakoningiopsis、SS-1-3為莖霉屬Chaunopycnissp.、QL-3-5為產(chǎn)黑色素短梗霉Aureobasidiummelanogenum、GL-4-1為菌核青霉Penicilliumsclerotiorum、GL-3-1為被孢霉屬Mortierellasp.。

        圖3 基于rDNA-ITS序列構(gòu)建的6種促生菌的系統(tǒng)進化樹

        3 結(jié)論與討論

        從貴州晴隆、三穗、關(guān)嶺的花櫚木種子際土壤共分離出16株真菌,篩選出6株同時具備4種促生功能的真菌,鑒定S-1-6、SS-2-3、SS-1-3、QL-3-5、GL-4-1和GL-3-1,結(jié)果分別為青霉屬(Penicilliumsp.)、擬康寧木霉(Trichodermakoningiopsis)、莖霉屬(Chaunopycnissp.)、產(chǎn)黑色素短梗霉(Aureobasidiummelanogenum)、菌核青霉(Penicilliumsclerotiorum)和被孢霉屬(Mortierellasp.),說明花櫚木種子際真菌比較豐富,且主要出現(xiàn)在種子吸脹前、吸脹后和萌發(fā)階段。

        從貴州3個不同地點的種子際土壤中分離出16株真菌,第1類和第2類種子際中未分離出真菌,原因可能是由于花櫚木種皮堅硬,未開始吸水膨脹,沒有代謝產(chǎn)物為真菌提供基本生長營養(yǎng),因此真菌無法同種子共生。第3類僅分離出2株、第4類9株、第5類5株,可見在種子吸脹待萌發(fā)階段,種子際真菌種類最多。通過促生功能的篩選,篩選出6株同時具有溶磷、解鉀、固氮、產(chǎn)IAA促生功能的真菌。根據(jù)生物學鑒定,最終確定該6株種子際真菌,分別是來自三穗SS-1-6青霉屬、SS-2-3擬康寧木霉、SS-1-3莖霉屬;來自晴隆的QL-3-5產(chǎn)黑色素短梗霉和來自關(guān)嶺GL-4-1菌核青霉、GL-3-1被孢霉屬。本研究分離出的促生真菌SS-1-6青霉屬、SS-2-3木霉屬(擬康寧木霉),這2個屬與前人從種子際中分離的菌屬一致[2、18],由于前人研究的菌種只鑒定到屬,因此與本研究分離的菌種不一定相同,其余菌種SS-1-3莖霉屬、QL-3-5產(chǎn)黑色素短梗霉、GL-3-1被孢霉屬是前人未從種子際中分離出的真菌。本研究只從少數(shù)樣點采樣就分離到了16株花櫚木種子際真菌,可見花櫚木種子際微生物很豐富,今后應(yīng)進一步擴大采樣點,深入探討花櫚木種子際微生物(包括真菌、細菌和放線菌)的多樣性,從中篩選出更多的促生菌。由于在第1、第2類種子際土壤中未分離出真菌,是否有其他類型的微生物與之共生有待于進一步研究;在種子脫落到萌發(fā)過程中,種子際微生物群落是如何發(fā)展演替的也是今后進一步研究的課題。

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