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        煙草花葉病毒P54基因的原核表達(dá)與蛋白純化

        2021-05-31 00:41:08田培潔張德詠張松柏
        關(guān)鍵詞:復(fù)性原核條帶

        李 聰,田培潔,張 宇,張德詠,,劉 勇,,張松柏, *

        (1. 湖南大學(xué)研究生院隆平分院,湖南 長(zhǎng)沙 410125;2. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410120;3. 湖南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,湖南 長(zhǎng)沙 410125)

        0 引言

        【研究意義】煙草花葉病毒(Tobacco mosaic virus,TMV)屬帚狀病毒科(Vigaviridae)科煙草花葉病毒屬 Tobamovirus病毒,可侵染36個(gè)科的400多種植物,每年給全世界農(nóng)作物造成的經(jīng)濟(jì)損失估計(jì)1億美元以上[1]。TMV的基因組為一條正義單鏈RNA,其基因組長(zhǎng)度約6 400 bp,編碼1個(gè)結(jié)構(gòu)蛋白和2個(gè)非結(jié)構(gòu)蛋白;其中TMV P183基因中,編碼一個(gè)假定的P54基因[2],其功能目前還鮮見報(bào)道。【前人研究進(jìn)展】TMV基因組第一個(gè)核苷酸連有一個(gè)7Gppp的帽子結(jié)構(gòu),緊接著是一個(gè)含有69個(gè)核苷酸的非翻譯前導(dǎo)序列,編碼TMV復(fù)制所需的專一性復(fù)制酶。從啟動(dòng)子到第一個(gè)終止密碼子可翻譯為P126蛋白,P126蛋白的C端有類似于螺旋酶和甲基轉(zhuǎn)移酶的基本結(jié)構(gòu)[3],其主要功能是參與TMV復(fù)制。然而僅有P126蛋白存在時(shí),TMV不能完成復(fù)制,表明TMV還編碼其他蛋白參與其基因組復(fù)制[2]。通讀P126基因的終止密碼子,可翻譯為P183蛋白,P183蛋白具有RNA依賴的RNA聚合酶結(jié)構(gòu),在TMV侵染后20~30 min就能合成足量的該蛋白,參與TMV基因組RNA復(fù)制,而僅有P183蛋白存在時(shí),TMV的復(fù)制效率非常低[2]。此外,在這個(gè)讀通區(qū)域中有一個(gè)起始密碼子和一個(gè)開放閱讀框(ORF),編碼了假定的P54蛋白,預(yù)測(cè)其功能與TMV的復(fù)制相關(guān)[4],然而,P54蛋白的功能,尚無研究證實(shí)?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】為研究P54蛋白的功能,需要對(duì)P54蛋白進(jìn)行原核表達(dá)并分離純化,獲得大量的P54蛋白?!緮M解決的關(guān)鍵問題】研究表明,植物病毒編碼的基因,在E coli中原核表達(dá),通常以包涵體形式存在,包涵體蛋白的復(fù)性純化是獲得有活性純化蛋白的技術(shù)難題[5]。本研究對(duì)包涵體進(jìn)行復(fù)性,脫鹽后進(jìn)行分離純化,以期獲得純化的P54重組蛋白,為P54蛋白的功能研究奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        TMV侵染三生煙(Nicotiana tabacum var. Samsun NN)葉片,本實(shí)驗(yàn)室保存;HiScript II One Step RT-PCR Kit(Dye Plus)購(gòu)自南京諾唯贊生物科技公司;原核表達(dá)載體pEASY?-Blunt E1、大腸桿菌(Escherichia coli)BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)于全式金試劑銷售有限公司(長(zhǎng)沙);DNA凝膠純化回收試劑盒購(gòu)于OMEGA公司;蛋白純化柱The Thermo Scientific?HisPur ? Ni-NTA Spin Columns、一 抗6x-His Tag Monoclonal Antibody(HIS.H8)、二抗Goat anti-Mouse IgG(H+L)Cross-Adsorbed Secondary Antibody,HRP購(gòu)自Thermo Fisher Scientific公司;BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒構(gòu)于北京索萊寶生物公司。

        1.2 RNA抽提及RT-PCR

        三生煙葉片總RNA抽提采用TrazoL法[6]。TMV P54基因的特異性RT-PCR擴(kuò)增引物以TMV基因組(Genbank登錄號(hào):HE818438.1)為模板設(shè)計(jì),添加雙酶切位點(diǎn)(下劃線)和保護(hù)堿基(TMV/rdrp/sacI/F:5′>ACCGAGCTCATGCAGTTTTACTATGATAAGTG TC<3′,TMV/rdrp/xhoI/R:5′>CCCCTCGAGACAAC TAGAGCCATCTATAAACAA<3′,)。

        以抽提的感染TMV三生煙總RNA為模板,P54基因特異性引物采用一步法進(jìn)行RT-PCR[7],PCR產(chǎn)物于1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),PCR產(chǎn)物采用DNA凝膠純化回收試劑盒(OMEGA公司)回收純化。

        1.3 重組原核表達(dá)載體構(gòu)建

        用PCR產(chǎn)物和pEASY?-Blunt E1,采用DNA凝膠純化回收試劑盒(OMEGA公司)回收純化PCR產(chǎn)物,將純化回收后的PCR產(chǎn)物連接至pEASY?-Blunt E1中。將連接好的載體轉(zhuǎn)化至E coli DH5α,以原核表達(dá)載體pEASY?- Blunt E1試劑盒自帶T7引物進(jìn)行PCR菌落鑒定,PCR產(chǎn)物委托北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司測(cè)序。

        1.4 TMV P54基因的原核表達(dá)條件優(yōu)化

        將測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pEASY?-Blunt E1::P54轉(zhuǎn)入E coli BL21(DE3)中,分別使用0.1、0.4、0.8和1.2 mmol·L?1異丙基硫代半乳糖苷(isopropyl β-Dthiogalactoside,IPTG)于28、37 ℃培養(yǎng)4 h進(jìn)行蛋白的表達(dá)及條件優(yōu)化。吸取2 mL培養(yǎng)物,用高速低溫離心機(jī)12 000 g,4 ℃,離心10 min收集菌體提取總蛋白。

        1.5 原核表達(dá)蛋白提取純化

        將 菌 體 收 集 懸 浮 于 裂 解 緩 沖 液(50 mmol·L?1Tris-HCl,50 mmol·L?1NaCl,pH 8.0)中,超聲破碎細(xì)胞(功率400 W,工作4 s,間歇4 s,共30 min)。破碎后菌液用高速低溫離心機(jī)12 000 g,4 ℃,離心10 min,取上清20 μL,沉淀用1×PBS懸浮后取20 uL;上清液和懸浮后沉淀用于SDS-PAGE鑒定。包涵體蛋白純化參照The Thermo Scientific? HisPur?Ni-NTA Spin Columns操作說明進(jìn)行,并將收集到的液體裝入透析袋,于8、6、4、2、0 mol·L?1尿素的梯度透析液(5%甘油、1% L-精氨酸、2% 甘氨酸、1×PBS,pH 8.0)中,于各個(gè)梯度透析液中4 ℃下透析復(fù)性12 h以上,收集液用高速低溫離心機(jī)12 000 g,4 ℃,離心10 min,保留上清,去除沉淀,純化后的重組蛋白進(jìn)行SDS-PAGE鑒定。

        1.6 Western blotting檢測(cè)

        將純化后的蛋白樣品經(jīng)SDS-PAGE電泳后,轉(zhuǎn)印到PVDF膜上,5%脫脂奶粉封閉,4 ℃一抗(6x-His Tag Monoclonal Antibody(HIS.H8)from Thermo Fisher Scientific)孵育過夜,清洗PVDF膜;于37 ℃進(jìn)行二抗(Goat anti-Mouse IgG(H+L)Cross-Adsorbed Secondary Antibody, HRP from Thermo Fisher Scientific)孵育,清洗PVDF膜,用Thermo Scientific? Pierce?ECL Plus Western Blotting Substrate顯色試劑盒進(jìn)行顯色檢測(cè)[8]。

        2.1 原核表達(dá)載體的構(gòu)建

        以感染TMV三生煙的總RNA為模版,RT-PCR擴(kuò)增TMV P54基因,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果表明,PCR擴(kuò)增得到1條大小約為1.5 kbp特異性條帶(圖1-A),純化回收后測(cè)序結(jié)果表明,該條帶大小為1 425 bp,與TMV P54基因的同源性高達(dá)100%。

        圖 1 原核表達(dá)載體p EASY?- Blunt E1::P54凝膠電泳分析Fig. 1 Electrophoresis of recombinant prokaryotic expressing plasmid, pEASY-Blunt E1::P54

        將P54基因條帶雙酶切后,插入雙酶切的pEASY?-Blunt E1,轉(zhuǎn)化E coli BL21(DE3)。菌落PCR擴(kuò)增得到了與預(yù)期大小一致的特異性條帶(圖1-B),表 明原核表達(dá)載體pEASY?-Blunt E1::P54構(gòu)建成功。

        2.2 P54基因的原核表達(dá)及蛋白鑒定

        將含重組質(zhì)粒pEASY?-Blunt E1::P54的E coli BL21(DE3),在37 ℃,0.5 mmol·L?1IPTG誘導(dǎo)4 h,分別取上清與沉淀,SDS-PAGE 檢測(cè)結(jié)果表明,37 ℃,0.5 mmol L?1IPTG誘導(dǎo)4 h,在55~70 kDa出現(xiàn)特異性目的條帶(圖2),即重組P54蛋白,并且重組E1-P54蛋 白大部分表達(dá)于包涵體中。

        2.3 P54原核表達(dá)條件的優(yōu)化

        為了探究P54蛋白原核表達(dá)的最優(yōu)條件,對(duì)誘導(dǎo)條件進(jìn)行優(yōu)化。分別利用0.1、0.4、0.8、1.2 mmol·L?1IPTG于28、37 ℃培養(yǎng)4 h。SDS-PAGE 電泳顯示(圖3),在28、37 ℃時(shí),大腸桿菌的上清蛋白中均未發(fā)現(xiàn)目的條帶(泳道1~4,9~12)。在大腸桿菌的沉淀蛋白中出現(xiàn)了目的條帶(泳道5~8,13~16),且在37 ℃下誘導(dǎo)的蛋白表達(dá)量高于在28 ℃;IPTG濃度超過0.4 mmol·L?1后,目的條帶無明顯變化;表明P54蛋白的最佳誘導(dǎo)溫度與最佳IPTG濃度分 別為37 ℃、0.4 mmol L?1。

        2.4 重組蛋白P54的純化與蛋白濃度測(cè)定

        重組P54蛋白包涵體經(jīng)過過柱純化,透析復(fù)性,SDS-PAGE結(jié)果表明,純化蛋白在55~70 kDa出現(xiàn)了1條與預(yù)測(cè)大小一致特異的蛋白條帶(圖4)。純化后的蛋白濃度測(cè)定參照索萊寶BCA試劑盒進(jìn)行,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線(y=0.46x+0.06, R2=0.94),計(jì)算純 化后蛋白含量為0.29 mg· mL?1。

        圖 2 P54蛋白誘導(dǎo)表達(dá)產(chǎn)物SDS-PAGE分析Fig. 2 SDS-PAGE analysis on induced expression products of P54

        圖 3 TMV P54基因表達(dá)條件優(yōu)化(A:28 ℃,B:37 ℃)Fig. 3 SDS-PAGE analysis on prokaryotic expressing of TMV P54 (A: 28 ℃; B: 37 ℃)

        2.5 P54重組蛋白的Western blot鑒定

        純化后的P54重組蛋白,采用6×His單克隆抗體進(jìn)行Western blotting檢測(cè),結(jié)果表明,純化后的重組P54蛋白,與6×His單克隆抗體與雜交條帶,證 實(shí)純化后的重組蛋白為P54重組蛋白(圖5)。

        3 討論與結(jié)論

        將TMV P54基因序列插入到原核表達(dá)載體pEASY-Blunt E1,在宿主菌E coli BL21(DE3)中進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),TMV P54蛋白主要以包涵體形式存在。包涵體復(fù)性后,透析復(fù)性后采用Ni-NTA柱層析純化,SDS-PAGE及Western-blotting證實(shí)純化得到了分子量大小約為60 kDa的P54重組蛋白,為大量表達(dá)P54蛋白,研究其生物學(xué)特性打下了基礎(chǔ)。

        圖 4 純化TMV P54重組蛋白SDS-PAGE分析Fig. 4 SDS-PAGE analysis on purified TMV P54

        圖 5 純化TMV P54重組蛋白Western blotting分析 Fig. 5 Western blot on purified TMV P54

        TMV的基因組復(fù)制研究表明,TMV編碼P183和P126蛋白,參與TMV的復(fù)制[9,10,11,12],此外,TMV還編碼一個(gè)假定的P54蛋白,預(yù)測(cè)其功能與TMV的復(fù)制相關(guān)[4],但尚無相關(guān)研究證實(shí)。有研究表明受染植物細(xì)胞的多聚核糖體中,可以檢測(cè)到P54基因的mRNA,卻未檢測(cè)到P54蛋白[13]。推測(cè)P54蛋白可能是一個(gè)特定時(shí)間表達(dá)蛋白,但目前尚無研究證實(shí)。因此,急需開展TMV編碼P54蛋白功能研究,為研究明確TMV復(fù)制分子機(jī)制提供科學(xué)基礎(chǔ)。

        采用原核表達(dá)技術(shù),純化獲得大量表達(dá)目標(biāo)蛋白,是研究目標(biāo)蛋白生物學(xué)功能的基礎(chǔ),影響外源蛋白原核表達(dá)水平及其生物活性的因素有多種,如目標(biāo)蛋白自身編碼基因、表達(dá)宿主菌以及誘導(dǎo)表達(dá)的條件等[14,15]。植物病毒編碼蛋白的原核表達(dá)研究表明,原核表達(dá)的植物病毒編碼蛋白,通常以包涵體形式存在[5],本研究結(jié)果得到類似結(jié)果,P54蛋白以包涵體形式存在。此外,溫度會(huì)顯著影響原核蛋白的表達(dá),在高溫誘導(dǎo)時(shí),大腸桿菌的生長(zhǎng)速度較快,蛋白表達(dá)的速度會(huì)隨之增快,導(dǎo)致表達(dá)的蛋白不能正確折疊,易形成包涵體[16,17]。在28 ℃和37 ℃,原核表達(dá)的P54蛋白均以包涵體的形式存在,表明P54蛋白形成包涵體,可能與蛋白的不能正確折疊無關(guān),而與蛋白本身特性有關(guān)。

        原核表達(dá)的蛋白包涵體,可復(fù)性恢復(fù)生物學(xué)活性[18],本研究采用鹽酸胍對(duì)P54重組蛋白進(jìn)行復(fù)性,并透析濃縮去掉鹽離子,獲得了純度和濃度均較高的重組蛋白,為后續(xù)深入研究煙草花葉病毒P54蛋白功能奠定基礎(chǔ)。

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