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        厚樸乙醇提取物固體分散體的制備

        2020-05-12 13:37:10成顏芬傅超美
        中成藥 2020年2期
        關鍵詞:溶出度提取物乙醇

        王 瀟,王 婷,成顏芬,何 單,劉 芳,傅超美

        (成都中醫(yī)藥大學藥學院,中藥材標準化教育部重點實驗室,四川省中藥資源系統(tǒng)研究與開發(fā)利用重點實驗室——省部共建國家重點實驗室培育基地,四川 成都 611137)

        厚樸始載于《神農本草經》,具有燥濕消痰、下氣除滿的功效[1-3],其主要成分為木脂素、生物堿、揮發(fā)油等,具有緩解胃腸運動障礙、抗抑郁、抗菌、抗炎等藥理作用[4],常與其他藥物合用,臨床使用廣泛,如《傷寒雜病論》 中的小承氣湯、半夏厚樸湯等[4]。厚樸傳統(tǒng)入藥形式為水煎液,隨著對其研究的不斷深入,提取方式也日益完善,在2015 年版《中國藥典》 中,有9 種中成藥都是以不同體積分數(shù)乙醇提取,在一定程度上提高了其有效成分提取率,但厚樸酚、和厚樸酚等主要有效成分難溶于水,其口服生物利用度仍然較低,從而限制了相關制劑開發(fā),影響了臨床應用[5-6]。

        針對藥物難溶性的問題,目前大多制備微乳、納米粒、脂質體、固體分散體等劑型加以改善[7-8],同時,中藥提取物多成分同時增溶是制劑領域的一大難題,將提取物制成固體分散體[9]后可實現(xiàn)這一點。前期報道,將厚樸酚、和厚樸酚、厚樸總酚制成固體分散體[10-12]可提高厚樸主要有效成分溶解性。本實驗制備厚樸乙醇提取物固體分散體[13],通過Box-Behnken 響應面法優(yōu)化其制備工藝,并進行體外表征,以期解決提取物多成分同時增溶的難題,為相關制劑開發(fā)提供參考。

        1 材料

        1.1 儀器 電子天平(上?;ǔ彪娖饔邢薰荆籞DHW 調溫電熱套(北京中興偉業(yè)儀器有限公司);SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式多用真空泵(鞏義市予華儀器有限責任公司);DZF-6050 臺式真空干燥箱(上海一恒科學儀器有限公司);UPK-I-107 優(yōu)普系列超純水器(四川優(yōu)普超純科技有限公司);LC-2030C 高效液相色譜儀(日本島津制作所);電子天平[十萬分之一,賽多利斯科學儀器(北京)有限公司];UV756CRT 紫外可見分光光度計(上海佑科儀器儀表有限公司)。

        1.2 試劑與藥物 厚樸采自四川省都江堰虹口鎮(zhèn),經成都中醫(yī)藥大學標本中心連艷老師鑒定為木蘭科植物厚樸Magnolia officinalisRehd.et Wils。厚樸酚(批號A0316AS,純度>98%)、和厚樸酚(批號S0318AS,純度>98%)對照品(大連美侖生物技術有限公司)。聚乙二醇6000(PEG6000)、羥丙基甲基纖維素(HPMC)(成都科龍化工試劑廠);泊洛沙姆188(F68,德國BASF 公司);聚乙烯吡咯烷酮(PVP,天津市歐博凱化工有限公司)。

        2 方法與結果

        2.1 提取物制備 根據(jù)課題組前期所得最佳提取工藝,飲片粉碎成粗粉,稱取約1 kg,8 倍量70%乙醇回流提取2 次,每次1.5 h,合并提取液,50 ℃下減壓濃縮至無醇味,提取液冷凍干燥,粉碎,即得。

        2.2 厚樸酚、和厚樸酚含有量測定

        2.2.1 對照品溶液制備 分別精密稱取厚樸酚、和厚樸酚對照品10.10、10.72 mg,置于50 mL 量瓶中,甲醇超聲溶解后稀釋至刻度,各取25 mL 于50 mL 量瓶中混合,即得。

        2.2.2 供試品溶液制備 取提取物約100 mg,精密稱定,置于100 mL 量瓶中,甲醇超聲溶解后稀釋至刻度,搖勻,經0.45 μm 微孔濾膜過濾,取續(xù)濾液,即得。

        2.2.3 色譜條件 參考2015 年版《中國藥典》,分析采用Agilent 5 TC-C18(2)色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相甲醇-0.1% 磷酸(78∶22);體積流量1.0 mL/min;檢測波長294 nm;柱溫25 ℃;進樣量10 μL。色譜圖見圖1。

        圖1 各成分HPLC 色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of various constituents

        2.2.4 方法學考察

        2.2.4.1 線性關系考察 精密量取“2.2.1”項下對照品溶液5 mL,甲醇倍比稀釋至厚樸酚質量濃度分別為3.16、6.31、12.63、25.25、50.50、101.00 μg/mL,和厚樸酚質量濃度分別為3.35、6.70、13.40、26.80、53.60、107.20 μg/mL,搖勻,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定。以溶液質量濃度為橫坐標(X),峰面積為縱坐標(Y)進行回歸,得方程分別為厚樸酚Y=15 915 320X+33 591(r=0.999 5),線性范圍3.16~101.00 μg/mL;和厚樸酚Y=16 793 512X+47 215(r=0.999 1),線性范圍3.35~107.20 μg/mL。表明各成分在各自范圍內線性關系良好。

        2.2.4.2 精密度試驗 精密量取“2.2.1”項下對照品溶液,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定6 次,測得厚樸酚、和厚樸酚峰面積RSD 分別為0.28%、0.34%,表明儀器精密度良好。

        2.2.4.3 穩(wěn)定性試驗 精密量取“2.2.2”項下供試品溶液,分別于0、3、6、12、24、48 h 在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定,測得厚樸酚、和厚樸酚峰面積RSD 分別為0.42%、0.34%,表明供試品溶液在48 h 內穩(wěn)定性良好。

        2.2.4.4 重復性試驗 取提取物適量,按“2.2.2”項下方法平行制備6 份供試品溶液,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定,測得厚樸酚、和厚樸酚含有量RSD 分別為1.32%、1.53%,表明該方法重復性良好。

        2.2.4.5 加樣回收率試驗 精密稱取6 份含有量已知的提取物,精密加入對照品溶液適量,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定,計算回收率。結果,厚樸酚、和厚樸酚平均加樣回收率分別為98.47%(RSD=1.92%),99.69%(RSD=2.31%)。

        2.2.5 測定結果 厚樸酚、和厚樸酚平均含有量(n=3)分別為(18.54 ± 0.18)%、(10.53 ±0.79)%。

        2.3 固體分散體制備[5]采用溶劑法、PEG6000-F68 聯(lián)合載體制備,溶出介質為人工腸液。取厚樸提取物適量,與載體按一定比例混合均勻后用適量乙醇溶解,置于磁力攪拌器上攪拌適當時間,旋蒸除去乙醇后置于真空干燥箱中24 h,取出,粉碎,過40 目篩,即得,置于干燥器中備用。

        2.4 體外溶出度測定 將約含1 g 厚樸提取物的固體分散體直接投入溶出杯中,按照2015 年版《中國藥典》 四部通則0931 第二法(槳法)[3]測定溶出度,溶出介質900 mL 人工腸液,轉速50 r/min,溶出液溫度(37±0.5)℃。分別于5、10、15、20、30、45、60、120 min 各取5 mL,補加同溫同體積溶出介質,取出液加同體積甲醇,0.45 μm微孔濾膜過濾,取續(xù)濾液,在“2.2.3”項色譜條件下進樣測定,計算厚樸酚、和厚樸酚總溶出率,繪制溶出度曲線。

        2.5 工藝考察

        2.5.1 制備方法 固定藥載比為1∶5,載體為F68,分別采用下列方法制備。(1)溶劑法,同“2.3”項;(2)熔融法,將載體置于蒸發(fā)皿中,70 ℃水浴鍋上使其熔融后加入適量厚樸提取物,水浴鍋上繼續(xù)攪拌均勻,室溫下冷卻變脆后粉碎;(3)溶劑-熔融法,將載體置于蒸發(fā)皿中,70 ℃水浴鍋上使其熔融后加入適量乙醇溶解的厚樸提取物,攪拌除去乙醇,室溫下冷卻,置于真空干燥箱中干燥后粉碎;(4)研磨法,將厚樸提取物和載體置于研缽中,用力研磨至顏色均勻,按“2.4”項下方法測定上述固體分散體溶出度,結果見圖2A,由此可知,120 min 內累積溶出度依次為溶劑法>熔融法>溶劑-熔融法>研磨法,故選擇溶劑法進行制備[14]。

        圖2 制備方法、溶出介質、載體種類對總溶出度的影響Fig.2 Effects of preparation method,dissolution medium and carrier kind on total dissolution rate

        2.5.2 溶出介質 固定藥載比為1∶5,載體為F68,按“2.3”項下方法制備固體分散體,按“2.4”項下方法分別測定其在人工胃液、人工腸液、純水中的溶出度,結果見圖2B。由此可知,120 min 內累積溶出度依次為人工腸液>純水>人工胃液,故選擇人工腸液作為溶出介質。

        2.5.3 載體種類 固定藥載比為1∶5,選擇PEG6000、F68、HPMC、PVP K30 作為載體,按“2.3”項下方法制備固體分散體,按“2.4”項下方法測定溶出度,結果見圖2C。由此可知,120 min內累積溶出度依次為PEG6000 大于F68 大于PVP K30 大于HPMC,故選擇PEG6000-F68(1∶1)作為載體,并可避免單一載體造成的老化問題[15]。

        2.6 單因素試驗 考察了載體(PEG6000-F68)比、藥載比、攪拌時間、乙醇體積分數(shù),考察四者對60 min 內厚樸酚、和厚樸酚總溶出度的影響,結果見圖3。由此可知,乙醇體積分數(shù)為90%時總溶出度最高,故固定溶劑為90% 乙醇,不作后續(xù)優(yōu)化。

        圖3 載體比、藥載比、攪拌時間、乙醇體積分數(shù)對總溶出度的影響Fig.3 Effects of carrier ratio,drug-carrier ratio,stirring time and ethanol concentration on total dissolution rate

        2.7 Box-Behnken 響應面法優(yōu)化 在單因素試驗基礎上,選擇載體比(A)、藥載比(B)、攪拌時間(C)作為影響因素,總溶出度(Y)作為評價指標來優(yōu)化制備工藝,因素水平見表1,結果見表2。

        表1 因素水平Tab.1 Factors and levels

        表2 試驗設計與結果Tab.2 Design and results of tests

        通過Design-Expert 10.0.7 軟件對表2 數(shù)據(jù)進行處理,得到擬合回歸方程為Y=96.89-4.10A+4.46B-2.94C-7.41AB+0.52AC-0.21BC-9.51A2-17.17B2-14.57C2,方差分析見表3。由表可知,模型P<0.01,表明其極顯著;失擬項P>0.05,表明模型擬合度良好;一次項中,A、B均為顯著項(P<0.05),C為不顯著項(P>0.05),程度依次為B>A>C;二次項中,A2、B2、C2均有顯著影響(P<0.05);交互項中,AB為顯著項(P<0.05),AC、BC均為不顯著項(P>0.05);調整系數(shù)為0.914 3,即能解釋91.43%響應值的變化,表明模型擬合程度高,試驗誤差小。響應面分析見圖4。

        由此可知,最優(yōu)制備工藝為載體比0.885∶1,藥載比1∶5.388,攪拌時間116.775 min,考慮到實際可操作性,將其修正為載體比0.9∶1,藥載比1∶5.4,攪拌時間115 min。按該優(yōu)化工藝進行3 批驗證試驗,測得平均溶出度為97.12%,RSD為1.77%,與預測值98.08%接近,表明模型穩(wěn)定可靠,工藝合理可行。

        圖4 各因素響應面圖Fig.4 Response surface plots for various factors

        2.8 體外表征

        2.8.1 體外溶出度 精密稱取厚樸提取物、厚樸物理混合物、厚樸固體分散體適量,按“2.4”項下方法測定總溶出度,結果見圖5,可知厚樸固體分散體能提高有效成分溶出度。

        2.8.2 掃描電鏡(SEM)圖6 顯示,提取物呈塊狀物,表面光滑或有細密小孔;載體為顆粒形,表面有明顯孔隙;藥物-載體物理混合物可見藥物塊狀物,載體顆粒物更小,顆粒劑也有孔隙存在;固體分散體呈無定形態(tài),完全看不到孔隙,推測藥物可能已高度分散于載體中,表明制備成功。

        表3 方差分析Tab.3 Analysis of variance

        圖5 厚樸各樣品溶出曲線Fig.5 Dissolution curves for various samples of M.officinalis

        圖6 厚樸各樣品SEM 圖Fig.6 SEM images for various samples of M.officinalis

        2.8.3 差示量熱掃描(DSC)以空鋁坩為參考池,另一空鋁坩為樣品池,放入約10 mg 樣品,掃描速度10 ℃/min,掃描范圍35~200 ℃,結果見圖7。由此可知,提取物在60 ℃左右有明顯吸熱峰;載體在40~50 ℃有2 個吸熱峰,吸熱峰較大;藥物-載體物理混合物在40~50 ℃也有2 個吸熱峰,但均較小;固體分散體吸熱峰消失,表明其以無定型狀態(tài)存在,并且制備成功。

        圖7 厚樸各樣品DSC 圖Fig.7 DSC diagrams for various samples of M.officinalis

        2.8.4 傅里葉變換紅外光譜(FT-IR)KBr 壓片,掃描范圍4 000~400 cm-1,結果見圖8。由此可知,提取物在3 381 cm-1有1 個強而寬的吸收峰,表明有-OH 存在;載體僅在3 485 cm-1處有1個小吸收峰,與提取物明顯不同;藥物-載體物理混合物中同時具有藥物、載體特征吸收峰,表明兩者之間未形成新化合鍵;固體分散體在3 416 cm-1處形成了1 個新吸收峰,表明在制備過程中發(fā)生了化學反應,可能藥物中-OH 在載體材料中形成分子內氫鍵,從而對其吸收峰位置、形狀、強度均產生一定影響。

        圖8 厚樸各樣品FT-IR 圖譜Fig.8 FT-IR spectra for various samples of M.officinalis

        3 討論

        厚樸乙醇提取物組成復雜,含有木脂素(如厚樸酚、和厚樸酚)、生物堿(如木蘭花堿)等成分,以厚樸酚、和厚樸酚為主,但兩者水溶性差,體外溶出度低[16],故本實驗以其總溶出度為評價指標,采用Box-Behnken 響應面法優(yōu)化[17]制備工藝,并進行體外表征。結果表明,工藝穩(wěn)定可行。

        在用PEG 6000、F68、HPMC、聚乙烯吡咯烷酮(PVP K30)等幾種水溶性材料制備固體分散體時,載體強大的增溶效果,可使藥物處于過飽和狀態(tài),并且后者在載體中的分散度大大提高[13],使其以分子形式不規(guī)則地分散在載體中,從而形成無定形固體分散體[18-20]。本實驗選擇PEG 6000、F68聯(lián)合載體,有利于同時增加厚樸乙醇提取物多成分溶出度,提高其生物利用度。

        固體分散體在儲存過程中,環(huán)境中的水分會競爭性地與藥物或載體結合,破壞藥物與載體之間的氫鍵相互作用,出現(xiàn)不穩(wěn)定這一“老化”問題[21]。今后,將針對厚樸乙醇提取物固體分散體的穩(wěn)定性、生物利用度進行深入研究。

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