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        高通量測序技術(shù)初步解析濃香型白酒窖泥細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)

        2020-03-28 08:15:48唐賢華
        中國釀造 2020年1期
        關(guān)鍵詞:濃香型高通量菌門

        唐賢華

        (四川工商職業(yè)技術(shù)學(xué)院 酒類與食品工程系,四川 都江堰 611830)

        白酒發(fā)酵是由多種微生物共同參與,在開放性的環(huán)境中進(jìn)行的一個(gè)復(fù)雜過程[1]。窖泥的質(zhì)量可直接決定酒質(zhì)的優(yōu)劣,歸根到底對白酒發(fā)酵過程起決定性作用的是窖泥微生物[2]。微生物以空間位置相對固定的窖泥作為棲息地[3],且經(jīng)過釀酒環(huán)境長時(shí)間的馴化,已經(jīng)形成了一個(gè)較為穩(wěn)定的微生物群落,并形成了一批具有產(chǎn)酒、產(chǎn)香功能的微生物,合理開發(fā)利用這些微生物,對白酒品質(zhì)的提升有重大意義[4]。

        目前關(guān)于窖泥微生物菌落結(jié)構(gòu)的研究方法主要有聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)克隆文庫技術(shù)、PCR-變性梯度凝膠電泳(denaturing gradient gel electrophoresis,DGGE)技術(shù)、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)單鏈構(gòu)象多態(tài)性(PCR-single strand conformation polymorphism,PCR-SSCP)分析、熒光原位雜交(fluorescence in situ hybridization,F(xiàn)ISH)技術(shù)、磷脂脂肪酸(phosphor lipid fatty acid,PLFA)指紋圖譜技術(shù)和高通量測序(high throughput sequencing,HTS)技術(shù)。其中高通量測序技術(shù),又稱“下一代”測序(next generation sequencing,NGS)技術(shù),能夠深度測序,是新一代測序技術(shù)。與其他方法相比,具有規(guī)模更大,通量更高,耗時(shí)越短等優(yōu)勢,可以快捷方便的讀取樣品中復(fù)雜的微生物結(jié)構(gòu),是分析復(fù)雜多菌種樣品的首選方法,已被廣泛應(yīng)用于動植物科學(xué)、醫(yī)學(xué)、土壤學(xué)等領(lǐng)域[5]。目前,關(guān)于采用高通量測序技術(shù)研究窖泥微生物群落的研究已有報(bào)道,王莉等[6]采用高通量測序技術(shù)對醬香型窖池窖底微生物進(jìn)行了研究,發(fā)現(xiàn)隨著窖底泥的不斷馴化,乳桿菌科(Lactobacillaceae)、梭菌科(Clostridiaceae)和瘤胃菌科(Ruminococcaceae)等厭氧微生物逐漸成為主要優(yōu)勢種群;雷振河[7]采用高通量測序技術(shù)對清香型大曲和酒醅中的微生物進(jìn)行了測定,對比二者在微生物群落結(jié)構(gòu)上的差異,得出大曲中優(yōu)勢原核微生物和真核微生物的種類;鄧杰等[8-9]利用高通量測序技術(shù)研究不同窖齡的瀘州老窖窖泥中細(xì)菌及古菌群落的分布情況;劉延波等[10]利用高通量測序技術(shù)分析濃香型白酒中溫曲和高溫曲的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu),并從中溫曲中首次檢測到小球菌屬(Pediococcus)、泛菌屬(Pantoea)、邁勒吉爾霉菌屬(Melghirimyces)等微生物,豐富了大曲中的微生物種類;呂錫斌等[11]運(yùn)用高通量測序技術(shù)分析了醬香型白酒下糙沙輪次微生物多樣性,確定了下糙沙的主要微生物種類,反映了不同階段微生物群落特點(diǎn)。

        本研究采用高通量測序技術(shù)對濃香型白酒窖泥的微生物群落進(jìn)行全面的研究,分析濃香型白酒窖泥細(xì)菌的主要構(gòu)成,并通過主成分分析(principal component analysis,PCA)對窖泥細(xì)菌的影響進(jìn)行評價(jià),有助于更好的了解濃香型窖泥微生物工作機(jī)理,為建立濃香型白酒窖泥微生物信息數(shù)據(jù)庫、提升濃香型白酒質(zhì)量提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 材料

        窖泥樣品:取自川南某白酒廠3個(gè)同期建造車間中的9口窖池,且窖池連續(xù)生產(chǎn)10年以上,取樣部位為每口窖底中心部位,取得窖泥樣品后將其編號為1~9,其中1~3、4~6、8~9為分別同一車間不同窖池窖泥。所取樣品用塑封袋密封后,迅速置于低溫取樣盒中冷藏運(yùn)回,并在-20 ℃條件下低溫冷凍保存。

        1.1.2 試劑

        PowerSoil 脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)Isolation Kit:美國MOBIO公司;Gel Extraction Kit:北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;Quant-iT PicoGreen DNA Kit:美國nvitrogen公司;無水乙醇(分析純):成都市科龍化工試劑廠;Buffer、MgCl2、ExTaq酶(5 U/μL)、脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside triphosphate,dNTPs)、DNA Marker:日本Takara公司;引物:上海生工生物有限公司;高通量測序試劑:美國Roche公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        DK-S28恒溫水浴鍋:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;SORVALLStratos高速冷凍離心機(jī)、Thermo 900超低溫冰箱:美國Thermo Scientific公司;TGL-16G臺式高速離心機(jī):上海實(shí)驗(yàn)儀器廠有限公司;Minisubcell水平電泳儀、GelDoc 2000凝膠成像系統(tǒng)、MyCycler PCR儀:美國Bio-Rad公司;D-160均質(zhì)機(jī):美國Scilogex公司;GS junior高通量測序儀:美國Roche公司;Cary Eclipse熒光分光光度計(jì):安捷倫科技(中國)有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 窖泥總DNA提取

        采用PowerSoil DNA Isolation Kit提取窖泥微生物總DNA,采用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測其完整性,DNA樣品于-20 ℃保存[12]。

        1.3.2 PCR擴(kuò)增

        以提取的窖泥微生物總DNA為模板,采用正向引物968FMID1~9和反向引物1401RMID1進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增體系:10×Buffer 2.5 μL,25 mmol/L dNTP 2 μL,MgCl22μL,10μmol/L正反向引物各0.5μL,5U/μLExTaq酶0.5μL,DNA模板0.3 μL,雙蒸水(ddH2O)16.7 μL。PCR擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性15 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,共30個(gè)循環(huán);72 ℃再延伸10 min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠檢測,檢測合格后送去測序,測序時(shí)通過正向引物上的數(shù)字標(biāo)簽區(qū)分不同樣品。

        1.3.3 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物純化

        采用Gel Extraction Kit對PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行回收、純化以除去引物二聚體,采用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測。采用Quant-iT PicoGreen Kit對純化后的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行定量[13]。

        1.3.4 高通量測序

        以定量好的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物為模板進(jìn)行微乳滴PCR(emulsion PCR,emPCR),emPCR擴(kuò)增體系:Mol.Bio.Grade Water 410μL,Additive515μL,AmpMix270μL,AmpPrimer80μL,Enzyme Mix 70 μL,Ppiase 2 μL。emPCR擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性30 s,58 ℃退火4.5 min,68 ℃延伸30 s,共50個(gè)循環(huán),10 ℃保溫。采用高通量測序技術(shù)對emPCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行測序。

        1.3.5 數(shù)據(jù)處理

        通過Cope V1.2.3.3軟件進(jìn)行序列拼接及過濾后利用Mothur軟件以平均鄰近聚類算法在97%的相似度水平下對窖泥樣品中細(xì)菌的操作分類單位(operational taxonomic unit,OTU)進(jìn)行劃分[14]。利用SPSS 20.0軟件對窖泥樣品的細(xì)菌屬進(jìn)行主成分分析(PCA)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 測序數(shù)據(jù)長度及序列有效性分析

        以9個(gè)窖泥樣品的DNA為模板,采用帶有特殊標(biāo)簽的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)純化后,以其為模板進(jìn)行emPCR擴(kuò)增,emPCR擴(kuò)增產(chǎn)物堿基長度在450 bp左右。采用高通量測序技術(shù)對emPCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行測序,通過標(biāo)簽信息區(qū)分不同樣品。本次測序共獲得298 405條序列,序列堿基平均長度為321 bp,序列堿基長度分布見圖1。由圖1可知,大部分序列的堿基長度集中在450 bp左右,序列堿基長度與實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)堿基長度基本一致。經(jīng)過Cope V1.2.3.3軟件篩選過濾掉低質(zhì)量序列和重復(fù)序列,最終獲得有效序列66 322條,有效序列的堿基長度在450 bp左右。

        2.2 窖泥中細(xì)菌門的分類

        圖1 測序序列堿基長度的分布Fig.1 Distribution of base length of sequencing sequences

        9個(gè)窖泥樣品共獲得2 050個(gè)可操作分類單元,其中1、2、3號窖泥樣品的OTU數(shù)分別是249、297、492個(gè);4、5、6號窖泥樣品的OTU數(shù)分別是195、61、305個(gè);7、8、9號窖泥樣品的OTU數(shù)分別是178、63、210個(gè)。采用Mothur軟件對以上數(shù)據(jù)分析處理,獲得不同細(xì)菌門分類,結(jié)果見圖2。

        圖2 不同窖泥樣品中細(xì)菌群落門的分類Fig.2 Classification of bacterial community in different pit mud samples based on phylum

        由圖2可知,9個(gè)窖泥樣品中共劃分出9個(gè)門,分別是厚壁菌門(Firmicutes)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、綠彎菌門(Chlorflexi)、互養(yǎng)菌門(Synergistetes)、變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)、無壁菌門(Tenericutes)、螺旋體門(Spirochaetes)和球孢菌門(Lebtisphaeria)。9個(gè)門中既有厭氧菌又有好氧菌,也有兼性厭氧菌,說明白酒發(fā)酵并不是處于單一嚴(yán)格厭氧的環(huán)境中。在每個(gè)窖泥樣品的細(xì)菌群落中,F(xiàn)irmicutes占主導(dǎo)地位,其占30%~55%;該類菌具有細(xì)胞壁結(jié)構(gòu),并且大多數(shù)能夠產(chǎn)生內(nèi)生孢子抵抗極端環(huán)境。Bacteroidetes占1%~7%,其中窖泥樣品4和9的Bacteroidetes數(shù)量較為接近,Bacteroidetes的大多數(shù)細(xì)菌寄生在動物腸道內(nèi),有部分屬于病原菌。在窖泥樣品1、2、3中未發(fā)現(xiàn)有Chlorflexi的存在,其他窖泥樣品中,Chlorflexi占2%~4%。Synergistetes有降解氨基酸能力,部分為專性厭氧,且能耐60 ℃的高溫;Synergistetes在不同窖泥樣品都有分布,占比為1%~6%。Proteobacteria是細(xì)菌中最大的一個(gè)門,大多數(shù)具有固氮能力,兼性或?qū)P詤捬酰舶ê芏嗖≡?;窖泥樣品中Proteobacteria占1%~4%。Actinobacteria大多數(shù)為好氧菌,少部分厭氧,可以產(chǎn)生抗生素;窖泥樣品7、8、9中未發(fā)現(xiàn)有Actinobacteria的存在,且在其他不同窖泥樣品中所占比例差異較大,為2%~11%。Tenericutes和Spirochaetes在不同窖泥樣品中所占比例基本相同,分別占1%~5%和1%~4%。Lebtisphaeria在不同窖泥樣品中的占比較為一致,都在1%左右。

        2.3 窖泥中細(xì)菌屬的分類

        在窖泥樣品中細(xì)菌門分類的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步對窖泥樣品中的細(xì)菌屬進(jìn)行分類,結(jié)果見圖3。

        圖3 不同窖泥樣品中細(xì)菌群落屬的分類Fig.3 Classification of bacterial community in different pit mud samples based on of genus

        由圖3可知,9個(gè)窖泥樣品中共獲得39個(gè)細(xì)菌屬,各個(gè)細(xì)菌屬在不同窖泥中的分布有以下特點(diǎn):八疊球菌屬(Sporobacter)在窖泥樣品1、2、3中占15%左右,而在其他窖泥中所占比例為6%左右;Sporobacter能在厭氧條件下代謝產(chǎn)生有機(jī)酸和芳香族化合物[15-16]。芽孢桿菌屬(Bacillus)在所有窖泥樣品中都存在,其中在5號窖泥中占比最高達(dá)到32.76%。紅蝽?xiàng)U菌屬(Coriobacterium)是一種厭氧菌[17],在窖泥樣品1、2、3中占5%左右,在其他窖泥樣品中占2%~3%。梭菌屬(Clostridium)在窖泥樣品1、2、3中所占比例較高,約為12%;其次是窖泥樣品4和6,約占3%;窖泥樣品7、8、9中最少,只占1%;梭菌屬(Clostridium)是一類嚴(yán)格厭氧菌,能夠代謝產(chǎn)生有機(jī)酸和醇[18]。纖維素單胞菌屬(Cellu-lomonas)在窖泥樣品1、2、3中約占4%,在其他窖泥中約占2%左右;纖維素單胞菌能夠產(chǎn)生纖維素酶[19],能夠提高釀酒原料的利用率。氨基桿菌屬(Aminobacter)在1、2、3號窖泥中占比最高,約占6%,4、6號窖泥中約占3%,7、8、9號窖泥中最少,不到1%,氨基桿菌屬能夠在厭氧條件下降解氨基酸[20]。棒桿菌屬(Corynebacterium)在1、2、3號窖泥中約占3%,在其他窖泥中占不到1%。芽孢八疊球菌屬(Sporosarcina)在1、2、3號窖泥中所占比最少,占2%左右,4、6號窖泥中占6%左右,8、9號窖泥中所占比最高約10%。相同車間窖泥中芽孢八疊球菌屬(Sporobacter)、Coriobacterium、Clostridium、Cellulomonas、Sediminibacter、Aminobacter、Corynebacterium、Sporosarcina所占比例基本相同。脫鹵素桿菌屬(Dehalobacter)、醋桿菌屬(Acetobacter)、互營菌屬(Syntrophus)、冷單胞菌屬(Psychromonas)只在7、8、9號窖泥中發(fā)現(xiàn)有一定比例的分布,而在其他窖泥中均未檢測出。

        2.4 窖泥中細(xì)菌主成分分析

        對9個(gè)窖泥樣品中的39個(gè)細(xì)菌屬進(jìn)行主成分分析,結(jié)果見表1。由表1可知,成分1、成分2、成分3、成分4的特征值>5,分別為10.414、10.094、7.634、5.446,累積貢獻(xiàn)達(dá)到83.97%。張文彤[21]在《IBM SPSS數(shù)據(jù)分析與挖掘?qū)崙?zhàn)案例精粹》中說方差貢獻(xiàn)率達(dá)到50%就可以酌情接受。為了統(tǒng)計(jì)方便,本研究選取方差貢獻(xiàn)率最大的前兩個(gè)主成分(累計(jì)方差貢獻(xiàn)率達(dá)到51.27%)進(jìn)行討論分析。因此按照成分1和成分2對窖泥中的細(xì)菌屬進(jìn)行分析,結(jié)果見圖4。細(xì)菌屬的主成分載荷值矩陣見表2。

        表1 細(xì)菌屬的主成分特征值Table 1 Principal components eigenvalues of bacteria

        圖4 按主成分1和主成分2劃分的窖泥樣品分布圖Fig.4 Distribution map of pit mud samples according to PC1 and PC2

        由圖4可知,窖泥樣品1、2、3,4、6,7、9分別聚為一組,基本按不同車間窖泥進(jìn)行劃分,窖泥樣品5、8聚為一組,分析原因可能是測序序列都較少,微生物覆蓋率較低的緣故。

        表2 細(xì)菌屬的主成分載荷值矩陣Table 2 Principal components load matrix of bacteria

        由表2可知,主成分1中,載荷值較高的細(xì)菌屬為Sporobacter、Coriobacterium、Clostridium、Cellulomonas、Sediminibacter、Aminobacter、Corynebacterium、Sporosarcina,載荷值分別為0.974、0.924、0.919、0.913、0.856、0.855、0.814、-0.808。其中,Sporosarcina對主成分1產(chǎn)生負(fù)向影響,其余為正向影響。主成分2中,載荷值較高的細(xì)菌屬為厭氧原體屬(Anaeroplasma)、Dehalobacter、Acetobacter、Syntrophus、Psychromonas,載 荷值分別為0.970、0.970、0.970、0.970、0.881,都為正向影響。

        3 結(jié)論

        本實(shí)驗(yàn)主要通過高通量測序法分析了濃香型白酒不同窖泥樣品中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)。通過高通量測序共獲得66 322條有效序列,2 050個(gè)OTU。其中窖泥樣品1、2、3平均獲得351個(gè)OTU,窖泥樣品4、5、6平均獲得214個(gè)OTU,窖泥樣品7、8、9平均獲得153個(gè)OTU。根據(jù)OTU,9個(gè)不同窖泥樣品中共分為9個(gè)門類,其中窖泥樣品1、2、3中共有6個(gè)門類,窖泥樣品4、5、6中共有9個(gè)門類,窖泥樣品7、8、9中共有8個(gè)門類。9個(gè)門類分別為厚壁菌門(Firmicutes)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、綠彎菌門(Chlorflexi)、互養(yǎng)菌門(Synergistetes)、變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)、柔壁菌門(Tenericutes)、螺旋體門(Spirochaetes)和Lebtisphaeria,其中Firmicutes占主導(dǎo)地位。在細(xì)菌門分離的基礎(chǔ)上,9個(gè)窖泥樣品中共獲得39個(gè)細(xì)菌屬。通過主成分分析(PCA)發(fā)現(xiàn),其中13個(gè)細(xì)菌屬對窖泥來源劃分的貢獻(xiàn)度較高。相同車間窖泥中Sporobacter、Coriobacterium、Clostridium、Cellulomonas、Sediminibacter、Aminobacterium、Corynebacterium、Sporosarcina所占基本相同。Dehalobacter、Acetobacter、Syntrophus、Psychromonas只在7、8、9號窖泥中發(fā)現(xiàn)有一定比例的分布,而在其他窖泥中均未檢測出,說明相同生產(chǎn)環(huán)境的窖泥微生物群落結(jié)構(gòu)基本是一致的。

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