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        新建輔助生殖實驗室的鼠胚培養(yǎng)質(zhì)控及鼠卵顯微注射分析

        2020-01-19 06:40:32柳嵐吳兵平李志敏林華李勵軍
        生殖醫(yī)學雜志 2020年1期
        關(guān)鍵詞:雌鼠卵裂體外受精

        柳嵐,吳兵平,李志敏,林華,李勵軍

        (莆田學院附屬醫(yī)院,莆田 351100)

        近年來,不孕不育患者呈逐年增加的趨勢,大部分患者需要借助輔助生殖技術(shù)(ART)治療實現(xiàn)成功受孕。人類輔助生殖實驗室是精卵結(jié)合和胚胎發(fā)育的場所,培養(yǎng)室的環(huán)境、培養(yǎng)體系及技術(shù)人員操作水平直接關(guān)系到 ART技術(shù)的成功與否[1-2]。作為新建輔助生殖實驗室,在開展人類ART技術(shù)之前,有必要對整個培養(yǎng)系統(tǒng)進行全面地分析評估。研究表明,小鼠體外受精法和體內(nèi)受精法胚胎培養(yǎng)可以很好地檢測新建輔助生殖實驗室的質(zhì)控情況[3-4]。并且通過鼠胚實驗合理評估實驗室培養(yǎng)系統(tǒng)的同時,可以提高技術(shù)人員的操作水平,為順利開展人類IVF、ICSI技術(shù)提供可靠的實驗依據(jù)和質(zhì)量控制保證。鼠卵是比較理想的ICSI模型,然而采用人ICSI操作系統(tǒng)進行鼠卵ICSI時效果不佳,卵子存活率低下,且鼠精的特殊結(jié)構(gòu)使得顯微注射操作相對困難[5-7]。為此,本研究分析比較了常規(guī)人卵顯微注射模式與鼠斷尾精子顯微注射模式的結(jié)局,探討鼠卵ICSI操作對新建輔助生殖實驗室顯微注射技術(shù)質(zhì)控的意義。

        材料與方法

        一、實驗材料

        1.實驗動物:昆明小鼠購自北京華阜康生物科技有限公司,雌鼠6~10周齡,雄鼠10周齡以上。分10個批次進行鼠胚實驗,每批次5只雌鼠,2只雄鼠。

        2.藥物與試劑:注射用血清促性腺激素(PMSG)購自寧波三生藥業(yè)有限公司,HCG購自馬鞍山豐原制藥廠。主要試劑采用美國COOK商品化培養(yǎng)液,培養(yǎng)液使用前1d配制好,配子緩沖液置37℃培養(yǎng)箱中平衡過夜,受精培養(yǎng)液、卵裂胚培養(yǎng)液、囊胚培養(yǎng)液置37℃、6%CO2培養(yǎng)箱中平衡過夜。

        3.主要耗材與設(shè)備:培養(yǎng)皿、四孔板、圓底管等均為美國Falcon公司產(chǎn)品;顯微注射針(SIC-50W-30)、顯微固定針(SHP-100-30)購自美國Sunlight Medical公司;以及德國Labotect培養(yǎng)箱、丹麥L-126MP工作站、日本Nikon顯微操作系統(tǒng)等。

        二、實驗方法

        1.實驗分組:按照授精方式的不同,將小鼠分為體內(nèi)受精組和體外受精組,每組每批次各促排2只雌鼠;并且按照ICSI操作的具體方法不同,將獲得的卵母細胞分為常規(guī)人卵顯微注射模式(C-ICSI組)和鼠斷尾精子顯微注射模式(D-ICSI組),每組每批次促排1只雌鼠,所獲得的卵母細胞脫顆粒細胞后用于顯微注射。

        2.小鼠超排卵:健康雌鼠于下午17時腹腔內(nèi)注射PMSG(10U/只),48h后腹腔內(nèi)注射 HCG(10U/只)。

        3.體內(nèi)受精組:注射HCG后雌鼠與雄鼠1∶1合籠,次日8∶00am觀察合籠雌鼠陰道栓情況,將有陰道栓的雌鼠頸椎脫臼法處死,打開腹腔取出卵巢及輸卵管,洗滌去除血跡,體視鏡下用1ml注射器輕輕劃破輸卵管壺腹部,收集合子團(即聚集成堆的受精卵)。將收集的合子團置于透明質(zhì)酸酶中,去除卵丘顆粒細胞后計數(shù)受精卵和未受精卵子數(shù)量,進行微滴培養(yǎng)觀察。

        4.體外受精組:次日8∶00am頸椎脫臼法處死未合籠的健康雌鼠,打開腹腔取出卵巢及輸卵管,洗滌去除血跡,體視鏡下用1ml注射器輕輕劃破輸卵管壺腹部,收集卵子團。雄鼠處死,取出附睪及輸精管,洗滌去除血跡,體視鏡下用1ml注射器劃破輸精管,釋放鼠精,上游法處理精子懸液。將精子懸液加入卵子團的受精四孔板中,調(diào)整精子濃度為1×106/ml,4~5h短時受精后收集受精卵進行微滴培養(yǎng)觀察。

        5.ICSI:卵子團置于透明質(zhì)酸酶中去除卵丘顆粒細胞后,轉(zhuǎn)入培養(yǎng)液,培養(yǎng)箱中孵育,待ICSI操作。安裝顯微注射針和固定針,準備ICSI操作皿,顯微注射針吸取制動鼠精或鼠斷尾精子頭,固定針固定卵子(第一極體位于6點或12點),精子推至注射針尖處,3點處垂直穿過透明帶并繼續(xù)水平進針,至卵胞漿中心或越過中心位置,回吸注射針至可見卵膜回彈快速返流時,將精子注入卵胞質(zhì)中,退針,收集存活卵子進行微滴培養(yǎng)觀察。C-ICSI組:即注射針在鼠精尾部中段輕壓,迅速回拉注射針劃破精子尾部制動;D-ICSI組:即顯微注射針壓住鼠精頸部,朝精子頭方向刮動使鼠精斷尾。

        6.胚胎觀察:體內(nèi)受精的合子團于透明質(zhì)酸酶消化處理后,觀察原核胚數(shù);體外受精、ICSI的于受精4~6h后觀察原核胚數(shù)。第1天(D1)觀察2-細胞數(shù),D2觀察4-細胞,D3觀察8-細胞/致密化8-細胞數(shù),D5觀察囊胚形成數(shù)。參照之前文獻方法統(tǒng)計受精率、卵裂率和囊胚形成率[8]。

        三、統(tǒng)計學方法

        采用SPSS軟件進行數(shù)據(jù)分析,計數(shù)資料以率(%)表示,組間比較采用χ2檢驗,P<0.05時表示差異有統(tǒng)計學意義。

        結(jié) 果

        一、小鼠胚胎的培養(yǎng)觀察

        小鼠卵子正常受精后,受精卵內(nèi)可見雌、雄原核形成,為原核期胚胎(圖1A);隨后進入卵裂期,第1次卵裂可見2個大小均一、無碎片的卵裂球,為2-細胞胚胎(圖1B);受精第2天可見4個大小均一、無碎片的卵裂球,為4-細胞胚胎(圖1C);受精第3天可見8個大小均一的卵裂球或致密化后緊密聯(lián)系在一起的8個卵裂球,為8-細胞/致密化8-細胞胚胎(圖1D);受精第5天可見囊胚腔形成、透明帶變薄,分化為內(nèi)細胞團和滋養(yǎng)外細胞層,部分囊胚進入孵化階段,為囊胚期胚胎(圖1E)。

        圖1 不同發(fā)育階段的小鼠胚胎(×200)

        二、體內(nèi)受精法和體外受精法胚胎培養(yǎng)的質(zhì)控結(jié)果

        共進行10個批次的鼠胚質(zhì)控分析,體內(nèi)受精法獲卵642枚,受精590枚,卵裂556枚,囊胚478枚;體外受精法獲卵630枚,受精514枚,卵裂480枚,囊胚392枚。體內(nèi)受精組的受精率顯著高于體外受精組(91.90%vs.81.59%,P<0.001)。兩組的卵裂率(94.24%vs.93.39%)、囊胚形成率(85.97%vs.81.67%)比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(表1)。

        三、兩種鼠卵顯微注射方法結(jié)局比較

        人卵顯微注射系統(tǒng)應(yīng)用于鼠ICSI時卵子存活率有降低的趨勢,但C-ICSI組與D-ICSI組的卵子存活率比較尚沒有顯著性差異(29.49%vs.30.52%,P>0.05)。顯微注射后的存活胚胎繼續(xù)進行培養(yǎng)觀察,相比于C-ICSI組,D-ICSI組的受精率(56.72%vs.42.53%)、卵 裂 率 (71.05%vs.43.24%)及囊胚形成率(61.11%vs.31.25%)顯著升高,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(表2)。

        表1 體內(nèi)受精法和體外受精法胚胎發(fā)育情況的比較 (%)

        表2 兩種顯微注射方法存活率及存活胚胎發(fā)育情況的比較(%)

        討 論

        由于小鼠胚胎與人胚胎有著幾乎相同的發(fā)育經(jīng)歷,鼠胚培養(yǎng)成為檢測人早期胚胎體外發(fā)育環(huán)境的最佳模式,是目前最常用的生殖實驗室質(zhì)量控制方法[1,9]。本實驗結(jié)果顯示體內(nèi)受精法和體外受精法的囊胚形成率均達80%,符合輔助生殖實驗室的質(zhì)控標準。兩種受精方法的效果略有不同,體內(nèi)受精法的受精率高的原因可能是體內(nèi)受精的卵母細胞處在穩(wěn)定的母體環(huán)境中,無需面臨溫度、滲透壓、PH等變化的應(yīng)激反應(yīng)[10-11]。

        從體內(nèi)受精、體外受精胚胎發(fā)育結(jié)局看,兩種受精方法均保持了較高的卵裂率和囊胚形成率,二者均能夠很好地檢測輔助生殖實驗室的穩(wěn)定情況。以上結(jié)果表明,作為新建的輔助生殖胚胎實驗室,我們的培養(yǎng)體系、實驗室技術(shù)人員操作水平已達標,可以為順利開展人類IVF技術(shù)提供可靠的實驗依據(jù)和質(zhì)量控制保證。

        目前,對于新建輔助生殖實驗室ICSI技術(shù)的質(zhì)量控制尚無代表性的動物模型。傳統(tǒng)觀點認為鼠卵體積小且具有易脆性,完全按照常規(guī)人卵顯微注射模式操作,鼠卵損傷嚴重,注射部位卵膜不易恢復(fù),卵膜易崩解死亡[12]。1995 年,Kimura等[13]借助Piezo儀器產(chǎn)生的高頻振動進行透明帶、卵膜穿入進行鼠卵ICSI后,鼠卵的存活率得以顯著提高,Wakayama等[14]將該技術(shù)成功應(yīng)用于鼠核移植及其干細胞建系,小鼠存活率可達94%~100%,然而Piezo-ICSI技術(shù)與人卵ICSI技術(shù)差別極大,無法完全模擬人卵ICSI技術(shù),不能代表人卵ICSI技術(shù)水平。非Piezo-ICSI技術(shù)的發(fā)展,尤其是兩步法非Piezo-ICSI技術(shù)[7,15]采用改良的喇叭形固定針對鼠卵先淺吸持后淺穿刺,再進一步深吸持并深穿刺,控制卵膜凹陷變形、破膜及其修復(fù)過程中的關(guān)鍵因素,提高了鼠卵的存活率。上述兩種鼠卵顯微注射模式可以獲得較好結(jié)局,但顯然與常規(guī)人卵顯微注射模式不同,且其安全性尚需進一步研究。

        作為新建的輔助生殖實驗室,為保證人類ICSI技術(shù)的順利開展,不考慮改變常規(guī)人卵顯微注射模式的操作練習。從胚胎發(fā)育的結(jié)局上分析,C-ICSI時的鼠卵子存活率僅30%左右,且受精率、卵裂率及囊胚形成率均較低。該組胚胎培養(yǎng)觀察時,原核期僅小部分胚胎見雌、雄原核,另一小部分胚胎可見異常卵裂現(xiàn)象,推斷此部分胚胎為孤雌激活現(xiàn)象,顯微注射時引發(fā)的鈣離子震蕩導致鼠卵孤雌激活的概率增高,而并非精子進入卵子后的正常發(fā)育過程。為排除ICSI操作技術(shù)上的因素,我們考慮是否因為鼠精結(jié)構(gòu)上的差異,采用人精制動、注射模式并不能有效激活鼠卵母細胞,鼠精與人精的明顯區(qū)別在于鼠精頭部呈勾形、尾部長且硬,為此引入D-ICSI組,直接顯微注射入鼠精頭。相比于C-ICSI組,D-ICSI組的受精率、卵裂率及囊胚形成率顯著升高,鼠精斷尾方式有效改善人卵ICSI操作系統(tǒng)應(yīng)用于小鼠實驗的結(jié)局,但并不提高鼠卵存活率。

        綜上所述,昆明小鼠配子體外受精法和體內(nèi)受精法均有較高的囊胚形成率,達到輔助生殖胚胎實驗室的質(zhì)控標準。人卵顯微注射系統(tǒng)應(yīng)用于鼠卵ICSI時,由于鼠與人的卵子、精子結(jié)構(gòu)上的差異,不應(yīng)成為新建輔助生殖實驗室ICSI技術(shù)的質(zhì)控標準,而僅適用于卵子顯微注射操作練習。通過鼠胚實驗,驗證了實驗室培養(yǎng)體系的穩(wěn)定性,為順利開展人類IVF、ICSI技術(shù)提供了技術(shù)保障。

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