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        烏司他丁對人卵巢癌HO-8910PM細胞轉移和侵襲的影響*

        2019-05-30 10:55:52李貴妃
        重慶醫(yī)學 2019年9期
        關鍵詞:卵巢癌引物劑量

        李 燕,李貴妃

        (1.成都市婦女兒童中心醫(yī)院婦產(chǎn)科,成都 610031;2.湖南師范大學醫(yī)學院,長沙 410006)

        卵巢癌是發(fā)病率位居第三而死亡率最高的婦科腫瘤,由于其早期癥狀不明顯,早期診斷方法不成熟,因而早期即可發(fā)生廣泛轉移,發(fā)現(xiàn)時超過70%的患者已屬晚期,由于廣泛的腹腔轉移而無法手術根治[1]。腫瘤細胞的遷移、侵襲和對基質(zhì)的降解是卵巢癌發(fā)生轉移的三大步驟[2]。其中,在腫瘤細胞穿透基底膜并降解細胞外基質(zhì)的這個關鍵步驟中,多種蛋白酶發(fā)揮著至關重要的作用,尿激酶型纖溶酶原激活物(urokinase-type plasminogen activator,uPA)就是其中之一[3]。

        烏司他丁(ulinastatin,UTI)作為尿激酶抑制劑,是一種從人類尿液中提取純化的糖蛋白,能有效抑制多種蛋白酶的活性,因而被廣泛應用于彌散性血管內(nèi)凝血、休克和胰腺炎等疾病的治療[4]。UTI還具有抗腫瘤的作用,已有研究證實其對乳腺癌、人口腔表皮樣癌、結腸癌等多種腫瘤細胞具有明顯的抑制遷移和侵襲的能力,且其機制與UTI抑制腫瘤細胞中uPA的表達有關。目前國內(nèi)對于UTI在人卵巢癌治療方面的研究鮮有報道,為了研究證實UTI是否對人卵巢癌細胞的遷移和侵襲有抑制作用及其機制是否與uPA有關,本實驗探討了UTI對人卵巢癌細胞遷移和侵襲能力的影響,以及對 uPA表達水平的影響,為進一步研究UTI對人卵巢癌的臨床輔助治療提供理論基礎。

        1 材料與方法

        1.1材料

        1.1.1細胞及主要試劑 人卵巢癌細胞系HO-8910PM購買于中科院上海細胞庫;胎牛血清和RPIM-1640購自杭州四季青生物工程材料有限公司;0.25%的胰酶購于美國GBICO公司;Matrigel購自美國BD公司;UTI購于廣東天普生化醫(yī)藥股份有限公司;AMV Reverse Transcriptase 購自美國Promega公司;DreamTaqTMGreen PCR Master Mix購自Fermentas公司;DNA MarkerⅠ購自日本TaKaRa公司;β-actin 單克隆抗體購自美國Sigma公司;HaltTMProtease Inhibitor Cocktail蛋白酶抑制劑、M-PER?Mammalian Protein Extraction Reagent和uPA抗體購自美國Thermo公司,HRP偶聯(lián)二抗購自美國Millipore公司;BCA Assay Reagent Kit、化學發(fā)光(ECL)試劑盒購自美國Pierce Chemical公司;其他常用試劑均為國產(chǎn)分析純試劑。

        1.1.2引物 引物用Primer Premier 5.0軟件設計并經(jīng)BLAST比對以后委托北京華大公司合成。uPA上游引物:5′-ACT CCA AAG GCAGCA ATG AA-3′,下游引物為:5′- AGA GTC TTT TGG CCA CAC TG-3′,產(chǎn)物長度469 bp。GAPDH上游引物為:5′- TAT AAA TTG AGC CCG CAG CC-3′,下游引物為:5′- ACA TGT AAA CCA TGT AGT TGA GGT-3′,產(chǎn)物長度244 bp。

        1.2方法

        1.2.1細胞培養(yǎng) HO-8910PM細胞接種于含10%胎牛血清的RPIM-1640細胞培養(yǎng)液中,37 ℃恒溫、5% CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每2~3天換液。 實驗所用的細胞均為處于對數(shù)生長期的細胞。

        1.2.2實驗分組及給藥 將處于對數(shù)生長期的HO-8910PM細胞分為對照組和UTI 低、中、高劑量組,對照組加入100 μL磷酸鹽緩沖液(PBS),UTI 低、中、高劑量組分別加入終濃度為400、800、1 600 U/mL UTI進行處理,處理后培養(yǎng)48 h再進行后續(xù)實驗。

        1.2.3劃痕實驗 細胞按照前述分組及各組處理方式處理48 h后經(jīng)0.25%胰酶消化,制成5×105個/mL的細胞懸液,向6孔板每孔中加入2 mL細胞后放置于 37 ℃含5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中過夜,次日取出后用200 μL的黃色槍頭于6孔板中劃痕,用無血清的RPIM-1640培養(yǎng)液沖洗后,于顯微鏡下觀察并拍照。培養(yǎng)48 h后,再次于顯微鏡下觀察并拍照,用Image J 軟件來測量劃痕區(qū)域的細胞遷移距離。

        1.2.4Transwell侵襲實驗 Matrigel先用冰預冷的RPIM-1640培養(yǎng)基稀釋成為2.5 mg/mL,按每孔25 μL加入24孔板的Transwell小室上腔,置于4 ℃冰箱過夜,使Matrigel聚合成膠。次日取對數(shù)生長期的對照組及各處理組細胞,經(jīng)0.25%胰酶消化后,離心并用RPIM-1640培養(yǎng)基調(diào)整細胞密度至2×106個/mL。上室接種100 μL不含血清的細胞懸液,下室加入500 μL含10%胎牛血清的1640完全培養(yǎng)基起趨化作用。每組設3個復孔,放置37 ℃恒溫、5% CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 24 h后,棄上室液體,擦凈膜上未侵襲的細胞及Matrigel,經(jīng)4%甲醛固定并用含 2%結晶紫的 2%乙醇染色,200倍光學顯微鏡下選擇濾膜上下左右中5個不同視野,計數(shù)每個視野侵襲細胞數(shù)。

        1.2.5反轉錄PCR(RT-PCR)檢測細胞中uPA mRNA的表達 HO-8910PM細胞按照前述分組及各組處理方式加藥處理48 h后,按照TrizolTMReagent說明書進行總RNA抽提,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?%瓊脂糖凝膠(含溴化乙錠)100 V電泳15 min后凝膠成像系統(tǒng)檢測RNA質(zhì)量,紫外分光光度計測定RNA濃度和純度。根據(jù)Promega公司反轉錄試劑盒說明書反轉錄合成cDNA,PCR反應體系為 20 μL,包括2×DreamTaqTMGreen PCR Master Mix 10 μL,cDNA 1.0 μL,上游引物(10 μmol/L)0.5 μL,下游引物(10 μmol/L)0.5 μL,添加去離子水使總體積達到20 μL。反應條件:95 ℃預變性10 min;95 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸60 s,32個循環(huán);72 ℃最終延伸10 min。GAPDH作為內(nèi)參。取適量PCR產(chǎn)物在1.5%瓊脂糖凝膠中電泳,凝膠成像系統(tǒng)掃描拍照,Image J 軟件分析并計算目的基因uPA/GAPDH的灰度比值。

        1.2.6Western blot檢測細胞uPA的表達 HO-8910PM細胞按照前述分組及各組處理方式加藥處理48 h后,迅速吸去培養(yǎng)液,并用冰預冷的PBS洗4次,每孔加入100 μL已加入HaltTMProtease Inhibitor Cocktail蛋白酶抑制劑的M-PER?Mammalian Protein Extraction Reagent,冰上放置30 min,間隔搖晃幾次;用乙醇處理過的細胞刮子將裂解的細胞刮下來,轉移至1.5 mL離心管。冰上超聲裂解細胞60 s,冰上放置15 min;1 300 r/min、4 ℃離心30 min,吸取上清至另一潔凈離心管中,分裝后保存于-80 ℃。提取的蛋白采用Pierce公司的BCA Protein Assay Reagent Kit進行定量。蛋白變性后取40 μg于12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)上先80 V電泳1 h,再120 V電泳4 h,電泳結束后,用濕轉法將蛋白質(zhì)轉移到以聚偏氟乙烯(PVDF)膜上;取下PVDF膜用麗春紅S染色,觀察轉膜效率。用含5%脫脂牛奶的-三乙醇胺緩沖鹽水(TBST)室溫封閉2 h;加入稀釋的一抗,4 ℃冷室中輕搖過夜,次日TBST洗3次,每次10 min;加入TBST稀釋的二抗,室溫孵育2 h,TBST洗3次,每次10 min;增強型ECL試劑盒進行ECL檢測,X光片壓片、顯影、定影。

        A:顯微鏡下各組HO-8910PM細胞轉移能力(×100);B:4組細胞遷移能力柱形圖a:P<0.05,與對照組比較;b:P<0.05,與低劑量組比較;c:P<0.05,與中劑量組比較

        圖1各組HO-8910PM細胞轉移能力比較

        A:顯微鏡下各組HO-8910PM細胞侵襲能力(×200);B:4組細胞侵襲能力柱形圖;a:P<0.05,與對照組比較;b:P<0.05,與低劑量組比較;c:P<0.05,與中劑量組比較

        圖2各組HO-8910PM細胞侵襲能力比較

        2 結 果

        2.1UTI對人卵巢癌細胞HO-8910PM轉移能力的影響 劃痕實驗結果顯示:與對照組相比,隨著UTI濃度增加,細胞遷移能力呈明顯減弱趨勢,各組間比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖1。

        2.2UTI對人卵巢癌細胞HO-8910PM侵襲能力的影響 HO-8910PM細胞經(jīng)不同濃度UTI處理后行Transwell實驗,結果顯示:細胞經(jīng)UTI處理后,穿過人工基底膜的細胞數(shù)明顯減少,侵襲能力受到明顯抑制,且呈濃度依賴,各組間比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖2。

        2.3UTI對uPA mRNA表達水平的影響 RT-PCR結果顯示:隨著UTI濃度的升高,uPA mRNA的相對表達水平逐漸降低,各組間比較差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖3。

        2.4UTI對uPA蛋白表達水平的影響 各處理組細胞uPA的蛋白表達水平較對照組明顯降低,隨著UTI濃度的升高,表達水平逐漸降低,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖4。

        1:對照組;2:低劑量組;3:中劑量組;4:高劑量組;A:PCR產(chǎn)物瓊脂糖電泳條帶;B:各組細胞uPA灰度值與GAPDH灰度值的比值柱形圖;a:P<0.05,與對照組比較;b:P<0.05,與低劑量組比較;c:P<0.05,與中劑量組比較

        圖3各組HO-8910PM細胞uPA mRNA表達水平比較

        1:對照組;2:低劑量組;3:中劑量組;4:高劑量組;A:Western blot蛋白條帶;B:各組細胞uPA灰度值與β-actin灰度值的比值柱形圖;a:P<0.05,與對照組比較;b:P<0.05,與低劑量組比較;c:P<0.05,與中劑量組比較

        圖4各組HO-8910PM細胞uPA蛋白表達水平比較

        3 討 論

        卵巢癌之所以是死亡率最高的婦科腫瘤,其最主要的原因就是其轉移和復發(fā)率高。目前,傳統(tǒng)的根治性手術聯(lián)合輔助性化療仍是臨床上治療卵巢癌的基本方法[5]。但由于高轉移率及化療的毒副反應,患者的生存率并沒有提高。因此,探索卵巢癌侵襲轉移的機制,從而有效地控制卵巢癌細胞轉移,找到一種既能抑制卵巢癌細胞轉移,又安全有效的藥物,對改善卵巢癌患者的預后,提高其生存率具有重要的臨床意義[6]。

        近年來,uPA系統(tǒng)在腫瘤轉移中的作用成為科學家們研究的熱點,已有大量實驗證實在乳腺癌、宮頸癌、卵巢癌、肺癌、口腔癌、結腸癌和前列腺癌等惡性腫瘤及其轉移瘤中uPA的表達水平均比正常組織和良性腫瘤細胞要高[7]。uPA在卵巢癌的轉移中也發(fā)揮著至關重要的作用,鄒存華等[8]對卵巢癌HO-8910PM細胞的研究結果顯示uPA所激活的纖溶系統(tǒng)在卵巢癌發(fā)生、發(fā)展過程中起重要作用。ZHANG等[9]的研究結果發(fā)現(xiàn),卵巢癌中uPA的陽性率和血清學濃度均明顯高于卵巢良性腫瘤和正常卵巢組織,uPA的表達和卵巢癌的病理分期和遠處轉移具有相關性。KONECNY等[10]對卵巢癌的研究表明,uPA的表達水平可以作為判斷卵巢癌預后的獨立因子,uPA低表達患者的腫瘤無進展生存期和5年生存率高于高表達患者。本研究中檢測到HO-8910PM細胞侵襲能力與細胞中uPA mRNA表達水平和uPA蛋白表達水平呈正相關,通過抑制細胞中uPA mRNA和uPA蛋白表達水平可以明顯抑制細胞的侵襲轉移能力,這進一步證實uPA在卵巢癌的侵襲轉移中發(fā)揮著重要作用。

        在深入探討uPA對卵巢癌侵襲轉移作用的同時,課題組也在思考能否通過抑制uPA表達從而達到抑制卵巢癌轉移的目的。本實驗中用到的UTI就是一種新型的uPA抑制劑。UTI一種從人類尿液中分離純化的尿胰蛋白酶抑制劑,能有效地抑制多種蛋白酶的活化,已被廣泛應用于彌散性血管內(nèi)凝血、休克和和胰腺炎等炎癥性疾病的治療。UTI還具有抗腫瘤的作用,已有研究證實其對乳腺癌、人口腔表皮樣癌、結腸癌等多種腫瘤細胞具有明顯的抑制遷移和侵襲的能力。目前國內(nèi)外多個課題組認為其機制與UTI抑制腫瘤細胞中uPA的表達有關。楊超文等[11]對體外肝癌細胞的研究中發(fā)現(xiàn),當UTI的濃度達到600 U/mL時,肝癌細胞SK-HEP-1細胞中uPA的mRNA和蛋白表達均減少,且隨UTI濃度增加到900 U/mL時,uPA可能即是UTI作用的直接靶點或其下游靶點,從而發(fā)揮抑制肝癌細胞遷移和轉移的作用。本文作者曾對高轉移性絨毛膜癌細胞體外研究也顯示uPA的表達水平與絨毛膜癌細胞的體外侵襲轉移密切相關,且UTI 可以通過降低uPA的表達水平從而有效抑制絨毛膜癌細胞的轉移[12]。KOBAYASHI等[13]對卵巢癌的研究中發(fā)現(xiàn)UTI的N-末端是UTI與腫瘤細胞結合位點,其C-末端則是抑制腫瘤轉移的部位。然而,UTI抑制腫瘤細胞轉移和侵襲的機制及UTI作用的靶點卻仍不明確。鑒于國內(nèi)對于UTI在人卵巢癌治療方面的研究鮮有報道,本實驗以高轉移人卵巢癌細胞HO-8910PM為研究對象,以證實UTI是否對人卵巢癌細胞的侵襲轉移有抑制作用及其機制是否與uPA有關。

        本實驗中,劃痕實驗結果顯示UTI能夠有效地抑制 HO-8910PM細胞的轉移,且與UTI的濃度相關;預鋪Matrigel的Transwell小室充分模擬了天然基底膜結構,侵襲實驗結果顯示UTI能明顯抑制HO-8910PM細胞的侵襲性,且抑制作用與UTI的濃度相關。為了進一步探討其轉移和侵襲的機制,本研究用RT-PCR和Western blot方法檢測了uPA的表達情況,隨著UTI濃度的逐漸增加,uPA的mRNA和蛋白表達水平均逐漸降低,呈劑量依賴性,說明UTI 抑制卵巢癌細胞侵襲轉移可能是通過抑制細胞中uPA的mRNA和蛋白表達來實現(xiàn)的。

        由于UTI來源于人體,抗原性小,對機體毒副反應小,不同于常規(guī)化療藥物,有開發(fā)為安全有效的抗腫瘤藥物的潛力,UTI有望通過下調(diào)卵巢癌細胞uPA的表達抑制卵巢癌的轉移,減少常規(guī)化療藥物的用量,緩解化療的毒副反應,改善預后。SONG等[14]對肝癌細胞的研究已經(jīng)表明抗腫瘤藥物表柔比星聯(lián)合UTI應用可以明顯改善肝癌預后。而本研究應用UTI干預HO-8910PM細胞后,細胞中uPA的表達水平下降,且與UTI 劑量負相關,同時其遷移和侵襲能力也呈下降趨勢,由此推測其作用機制可能與UTI下調(diào)了與卵巢癌侵襲轉移密切相關的 uPA基因表達有關,為UTI用于卵巢癌輔助治療用藥提供了理論依據(jù)和可能性,但具體作用機制還需進一步研究。

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