李哲,方明珠,陳紅,郭鋼花,范家宏,毛志娟
1.鄭州大學(xué)第五附屬醫(yī)院,河南鄭州市450052;2.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)院,湖北武漢市430030
人誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞(human-induced pluripotent stem cells,iPSCs)是將特定的多能遺傳基因?qū)塍w細(xì)胞獲得的一種類(lèi)似胚胎干細(xì)胞的多能干細(xì)胞。相比于胚胎干細(xì)胞,iPSCs來(lái)源充足,并具有疾病特異性,在多種疾病,如心血管疾病[1]、脊髓損傷[2]、腦卒中[3-4]、神經(jīng)退行性疾病[5-6]等的研究和治療中,具有廣泛潛能。
運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元病是一種選擇性侵犯大腦皮層、腦干和脊髓運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的神經(jīng)退行性疾病,病因不明,目前尚無(wú)有效治療手段。肌萎縮側(cè)索硬化癥為最常見(jiàn)的神經(jīng)退行性疾病,針對(duì)該病的細(xì)胞療法已進(jìn)入臨床前期實(shí)驗(yàn),如利用患者體內(nèi)間充質(zhì)干細(xì)胞(NCT:02917681、02290886、01609283、02881489)和神經(jīng)干細(xì)胞(NCT:02943850、01730716)的移植,利用患者來(lái)源iPSCs建立疾病特異性細(xì)胞庫(kù)(NCT:00801333、02574390、00874783)以進(jìn)行機(jī)制研究。在實(shí)驗(yàn)室研究中,利用iPSCs分化為特定類(lèi)型的神經(jīng)細(xì)胞,建立體外細(xì)胞[5]或動(dòng)物模型[7-8]為目前研究熱點(diǎn)。
培養(yǎng)iPSCs關(guān)鍵在于維持其未分化及無(wú)限增殖的特性,主要為有飼養(yǎng)層培養(yǎng)和無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)兩種方法。有飼養(yǎng)層培養(yǎng)將iPSCs與飼養(yǎng)層細(xì)胞共培養(yǎng),通過(guò)飼養(yǎng)層細(xì)胞產(chǎn)生的多種因子,維持iPSCs的增殖,且保持其核型正常。但有飼養(yǎng)層培養(yǎng)需頻繁制備飼養(yǎng)層細(xì)胞以支持iPSCs生長(zhǎng),增加了體外培養(yǎng)的工作量,且飼養(yǎng)層細(xì)胞本身可能攜帶及分泌異源性物質(zhì),所培養(yǎng)的干細(xì)胞可引發(fā)人體免疫排斥,不適于臨床應(yīng)用[9-10],因此無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)方法逐漸興起。
無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)使用細(xì)胞外基質(zhì)促進(jìn)細(xì)胞貼壁,用添加細(xì)胞因子的限定性培養(yǎng)基維持干細(xì)胞生長(zhǎng)。無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)的最大特點(diǎn)是能夠減少或消除飼養(yǎng)層細(xì)胞所帶來(lái)的干擾。
兩種培養(yǎng)方法均可維持干細(xì)胞體外長(zhǎng)期增殖[11-12]。但關(guān)于不同培養(yǎng)方法干細(xì)胞神經(jīng)分化特性的研究仍較少,而誘導(dǎo)iPSCs獲得高純度神經(jīng)細(xì)胞是臨床及基礎(chǔ)研究中的關(guān)鍵步驟。本實(shí)驗(yàn)利用有飼養(yǎng)層及無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)方法,結(jié)合Du等[13]的脊髓運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元分化方案,利用不同小分子組合,經(jīng)誘導(dǎo)iPSCs 12 d,定向分化為特定類(lèi)型的神經(jīng)前體細(xì)胞——脊髓運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元前體細(xì)胞(motor neuron precursor cells,MNP),并在比較兩種體系中的分化效率,為后期優(yōu)化分化方案提供依據(jù)。
iPSCs株由健康成年人外周血通過(guò)仙臺(tái)病毒重編程獲得。孕13.5 d CF1小鼠購(gòu)自上海斯萊克公司。
DMEM/F12、Neurobasal、Knockout血清替代物(Knockout serum substitute,KSR)、N2添加劑、B27添加劑、GlutaMAX、胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、非必需氨基酸(nonessential amino acids,NEAA)、L-谷氨酰胺、胰酶:GIBCO公司。mTeSR1培養(yǎng)基:STEMMCELL公司。DMEM高糖:HYCLONE公司。β-巰基乙醇、抗壞血酸(ascorbic acid,AA)、Dispase、明膠、兔來(lái)源HOXA3多克隆抗體:SIGMA公司。重組人堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF):PEPROTECH公司。山羊來(lái)源SOX1、SOX2多克隆抗體:RNDSYSTEMS公司。兔來(lái)源OLIG2多克隆抗體:MILLIPORE公司。兔來(lái)源OCT4抗體:CELL SIGNALING TECHNOLOGY公司。兔來(lái)源PAX6抗體:BIOLEGEND公司。二抗均為INVITROGEN公司產(chǎn)品。CHIR99021(CHIR)、DMH1:TORCRIS 公 司 。SB431542(SB)、視 黃 酸 (retinoic acid,RA)、 Purmorphamine(Pur):STEMGENT公司。熒光顯微鏡:NIKON公司。
取出孕鼠宮內(nèi)胎鼠,分離全層皮膚組織,用鼠胚胎成纖維細(xì)胞(mouse embryonic fibroblast,MEF)培養(yǎng)基制成單細(xì)胞懸液,接種至培養(yǎng)瓶中作為P0細(xì)胞。細(xì)胞長(zhǎng)至80%左右匯合時(shí),1∶3傳代。收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期P6~P10細(xì)胞,送輻照中心行γ射線照射。具體制備方法見(jiàn)參考文獻(xiàn)[14]。飼養(yǎng)層細(xì)胞以3.5×105/孔密度接種至體積分?jǐn)?shù)0.1%明膠溶液包被的6孔板中,培養(yǎng)24 h后接種iPSCs。
有飼養(yǎng)層體系組成如下。①飼養(yǎng)層細(xì)胞:γ射線處理后的MEF。②無(wú)血清培養(yǎng)基,成分為78%DMEM/F12+10%KSR+1%NEAA+1 mmol/L Gluta-MAX+0.1 mmol/L β-巰基乙醇,使用時(shí)加入20 ng/ml bFGF。iPSCs于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),每天換液。根據(jù)細(xì)胞生長(zhǎng)情況,每5~6天用1 mg/ml Dispase消化傳代1次。iPSCs傳代時(shí),需用槍頭刮去分化嚴(yán)重克隆,保證iPSCs狀態(tài)良好。
無(wú)飼養(yǎng)層體系組成如下:①細(xì)胞外基質(zhì)matrigel;②限定性培養(yǎng)基mTeSR1培養(yǎng)基。傳代前用Matrigel 37℃包被6孔板1 h。選取飼養(yǎng)層上待傳代且狀態(tài)良好的iPSCs克隆,機(jī)械切割后接種于6孔板中,換為mTeSR1培養(yǎng)基,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),每天換液。每4~5天用1 mg/ml Dispase消化傳代1次。
分化過(guò)程主要經(jīng)過(guò)以下過(guò)程:①iPSCs向神經(jīng)上皮前體細(xì)胞(neuroepithelial progenitors,NEP)分化;②NEP向MNP分化。iPSCs傳代第2天記為分化第0天,加入含有小分子化合物CHIR、DMH1、SB的NEP培養(yǎng)基,誘導(dǎo)細(xì)胞向神經(jīng)化尾側(cè)化分化,第6天獲得NEP細(xì)胞,表達(dá)尾側(cè)化神經(jīng)上皮細(xì)胞標(biāo)記物SOX1、HOXA3;倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。第6天給予含RA及SHH激動(dòng)劑Pur的MNP培養(yǎng)基,誘導(dǎo)神經(jīng)上皮細(xì)胞尾側(cè)化和腹側(cè)化,分化第12天獲得MNP細(xì)胞,表達(dá)pMN區(qū)標(biāo)記物OLIG2;倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化。
分化基礎(chǔ)培養(yǎng)基為47%DMEM/F12+48%Neurobasal+0.5%N2+1%B27+1 mmol/L L-谷氨酰胺+0.1 mmol/L AA;NEP培養(yǎng)基為分化基礎(chǔ)培養(yǎng)基+3 μmol/L CHIR+2 μmol/L SB+2 μmol/L DMH1;MNP 培養(yǎng)基為分化基礎(chǔ)培養(yǎng)基+1 μmol/L CHIR+2 μmol/L SB+2 μmol/L DMH1+0.1 μmol/L RA+0.5 μmol/L Pur。
收集分化第6天和第12天細(xì)胞,Trizol法提取總RNA并測(cè)量濃度,定量5 μg進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,并稀釋10倍。以GAPDH為內(nèi)參,采用SYBR Green Master Mix熒光染料法行RT-qPCR,檢測(cè)SOX1、HOXA、PAX6、OLIG2、SOX2、OCT4基因水平。反應(yīng)條件為95℃預(yù)變性10 min,95℃變性30 s,60℃退火 30 s,循環(huán) 40 次。所用引物序列見(jiàn)表 1。2-ΔΔCt計(jì)算目的基因相對(duì)表達(dá)量。重復(fù)3次,取均值。
表1 RT-qPCR引物序列
iPSCs在體外培養(yǎng)5代后,行多能性標(biāo)記物OCT4、SOX2染色;誘導(dǎo)第6天,行SOX1、HOXA3熒光染色;誘導(dǎo)第12天,行OLIG2、OCT4、PAX6熒光染色。
4%多聚甲醛室溫固定20 min,0.1%Triton-X-100破膜10 min,驢血清室溫封閉1 h,加入適當(dāng)比例稀釋的一抗:SOX1 1∶500、SOX2 1∶40、HOXA3 1∶1000、 OLIG2 1∶ 500、 OCT4 1∶ 500、 PAX6 1∶1000。濕盒中4℃過(guò)夜。12 h后棄一抗,加入適當(dāng)比例稀釋的二抗:Alexa Fluor 488標(biāo)記驢抗山羊lgG 1∶1000、驢抗兔lgG 1∶1000;Alexa Fluor 594標(biāo)記驢抗山羊lgG 1∶1000、驢抗兔lgG 1∶1000。室溫避光處理50 min,加入DAPI核染10 min。甘油封片,熒光顯微鏡下拍照。每組選兩張玻片,每張玻片隨機(jī)選5個(gè)非重疊視野,行陽(yáng)性細(xì)胞和總細(xì)胞計(jì)數(shù),計(jì)算每張玻片平均陽(yáng)性細(xì)胞率。
采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。每組數(shù)據(jù)來(lái)自3次獨(dú)立實(shí)驗(yàn),以(xˉ±s)表示,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。顯著性水平α=0.05。
在有飼養(yǎng)層體系中,iPSCs呈克隆狀生長(zhǎng),克隆為圓形或橢圓形,邊界清晰;克隆內(nèi)細(xì)胞緊密排列,細(xì)胞核大、核仁清晰,核質(zhì)比較高。無(wú)飼養(yǎng)層體系中,iPSCs扁平貼壁生長(zhǎng),形成不規(guī)則形細(xì)胞克隆;克隆內(nèi)細(xì)胞排列松散,核質(zhì)比較高。
分化第6天,有飼養(yǎng)層細(xì)胞核質(zhì)比下降,克隆中央細(xì)胞堆積增厚,出現(xiàn)早期花環(huán)狀結(jié)構(gòu)。無(wú)飼養(yǎng)層細(xì)胞核質(zhì)比下降,細(xì)胞單層致密生長(zhǎng),無(wú)特異性結(jié)構(gòu)。
圖1 兩種體系下培養(yǎng)的iPSCs、NEP和MNP(倒置顯微鏡,100×)
分化第12天,有飼養(yǎng)層細(xì)胞呈長(zhǎng)梭形,排列成典型玫瑰花環(huán)樣結(jié)構(gòu),細(xì)胞呈多層生長(zhǎng),花環(huán)中央出現(xiàn)空心結(jié)構(gòu),花環(huán)之間分界清晰。無(wú)飼養(yǎng)層細(xì)胞同樣出現(xiàn)花環(huán)結(jié)構(gòu),細(xì)胞呈單層緊密排列,無(wú)明顯立體結(jié)構(gòu),花環(huán)之間分界較模糊。兩種體系下克隆邊緣均有未分化單層細(xì)胞殘留。見(jiàn)圖1。
iPSCs體外培養(yǎng)5代后,均表達(dá)多能性抗原SOX2、OCT4(圖2)。分化第6天,細(xì)胞均表達(dá)NEP標(biāo)記物SOX1及尾側(cè)化標(biāo)記HOXA3(圖3)。分化第12天,細(xì)胞均表達(dá)MNP相關(guān)標(biāo)記物OLIG2、PAX6,低表達(dá)多能性標(biāo)記物OCT4(圖4)。有飼養(yǎng)層細(xì)胞SOX1、HOXA3、OLIG2陽(yáng)性細(xì)胞率明顯高于無(wú)飼養(yǎng)層細(xì)胞(p<0.01)。OCT4表達(dá)量均極低,且無(wú)顯著性差異(P>0.05)。見(jiàn)表2。
分化第6天,有飼養(yǎng)層培養(yǎng)的NEP細(xì)胞SOX1和HOXA3基因表達(dá)明顯高于無(wú)飼養(yǎng)層(p<0.01);分化第12天,有飼養(yǎng)層培養(yǎng)的MNP細(xì)胞OLIG2和OCT4表達(dá)水平顯著高于無(wú)飼養(yǎng)層(p<0.001);SOX2和PAX6表達(dá)兩組無(wú)顯著性差異(P>0.05)。見(jiàn)表3。
表2 兩組細(xì)胞標(biāo)記蛋白陽(yáng)性細(xì)胞率(%)
圖2 兩種體系下培養(yǎng)細(xì)胞多能性抗原表達(dá)(免疫熒光染色,200×)
圖3 兩種體系下培養(yǎng)細(xì)胞NEP標(biāo)記抗原表達(dá)(免疫熒光染色,200×)
圖4 兩種體系下培養(yǎng)細(xì)胞MNP標(biāo)記抗原及多能性抗原表達(dá)(免疫熒光染色)
表3 兩組細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)比較(2-ΔΔCt)
iPSCs是可以分化為三個(gè)胚層的多潛能干細(xì)胞,將其分化為特定區(qū)域神經(jīng)元或神經(jīng)前體細(xì)胞,為目前研究熱點(diǎn)。
通過(guò)小分子可逐步誘導(dǎo)iPSCs向特定區(qū)域神經(jīng)元分化。CHIR為Wnt信號(hào)激動(dòng)劑,DMH1和SB分別為骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)及Activin/Nodal通路抑制劑,三者共同作用可誘導(dǎo)細(xì)胞向神經(jīng)尾側(cè)化分化,使細(xì)胞表達(dá)神經(jīng)發(fā)育早期標(biāo)志物SOX1及尾側(cè)化標(biāo)志物HOXA3。
神經(jīng)發(fā)育過(guò)程中,pMN區(qū)域產(chǎn)生所有的運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元[15],Pur為SHH通路激動(dòng)劑,適當(dāng)濃度可誘導(dǎo)神經(jīng)上皮向脊髓腹側(cè)pMN區(qū)神經(jīng)元分化。OLIG2是脊索腹側(cè)pMN區(qū)域的重要標(biāo)記,OLIG2基因敲除后,pMN區(qū)域缺失,脊髓運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元缺失[16-17]。目前公認(rèn)OLIG2蛋白為脊髓運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元前體細(xì)胞特異性標(biāo)志物。
本研究顯示,兩種體系下iPSCs均能有效分化為MNP,但有飼養(yǎng)層分化效率更高。Gong等[18]報(bào)道,飼養(yǎng)層細(xì)胞能分泌白血病抑制因子和bFGF等多種生長(zhǎng)因子。MEF較其他飼養(yǎng)層細(xì)胞可以更好維持胚胎干細(xì)胞正常核型[19],促進(jìn)神經(jīng)上皮發(fā)生。飼養(yǎng)層細(xì)胞作為iPSCs的細(xì)胞外基質(zhì),也為細(xì)胞本身維持和神經(jīng)發(fā)生提供良好微環(huán)境,對(duì)NEP及MNP的發(fā)生起到促進(jìn)和支持作用。
然而,有飼養(yǎng)層培養(yǎng)體系限制了iPSCs的批量擴(kuò)增,且引入的動(dòng)物源性細(xì)胞增加免疫排斥風(fēng)險(xiǎn)。Martin等[20]報(bào)道,MEF飼養(yǎng)層上培養(yǎng)的人胚胎干細(xì)胞可以表達(dá)非人源的唾液酸,引起人體免疫應(yīng)答。目前iPSCs的無(wú)異源性培養(yǎng)體系有較多研究[21-23],如利用人血清衍生蛋白代替飼養(yǎng)層細(xì)胞,建立無(wú)異源性iPSCs培養(yǎng)體系[24]。然而這些體系中所用的蛋白或細(xì)胞來(lái)源有限,成本昂貴,不利于細(xì)胞批量生產(chǎn),且各種體系下培養(yǎng)的細(xì)胞向特定類(lèi)型細(xì)胞的分化效率需進(jìn)一步研究。
分化過(guò)程中,多能標(biāo)記蛋白OCT4表達(dá)下調(diào),有飼養(yǎng)層MNP中OCT4基因轉(zhuǎn)錄水平高于無(wú)飼養(yǎng)層。OCT4蛋白為細(xì)胞多能性標(biāo)志物,Wnt通路在維持干細(xì)胞多能性中發(fā)揮重要作用[25],Wnt經(jīng)典通路中核心蛋白β-Catenin可增強(qiáng)OCT4的活性[26]。而在飼養(yǎng)層不同的培養(yǎng)條件下,人胚胎干細(xì)胞Wnt信號(hào)起始狀態(tài)存在差異,可能對(duì)細(xì)胞分化和相關(guān)信號(hào)通路的研究結(jié)果有較大影響[27]。推測(cè)兩種體系中Wnt信號(hào)通路初始狀態(tài)的差異,使有飼養(yǎng)層培養(yǎng)細(xì)胞后期OCT4轉(zhuǎn)錄水平高于無(wú)飼養(yǎng)層。
在細(xì)胞分化的不同階段加入小分子化合物組合,可以在有飼養(yǎng)層及無(wú)飼養(yǎng)層體系中同時(shí)獲得特定區(qū)域的神經(jīng)細(xì)胞——MNP,且有飼養(yǎng)層體系中分化效率更高。但飼養(yǎng)層細(xì)胞增加了后期免疫排斥的概率,不利于細(xì)胞移植。無(wú)飼養(yǎng)層培養(yǎng)體系減少了異源性細(xì)胞的介入,可進(jìn)行iPSCs的批量擴(kuò)增及分化。如何利用低或無(wú)免疫原性的培養(yǎng)體系獲得大量神經(jīng)前體細(xì)胞,仍需進(jìn)一步嘗試。
[1]周云國(guó),曹玲玲,洪葵.誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞在遺傳性心臟病實(shí)驗(yàn)研究中的應(yīng)用[J].中國(guó)康復(fù)理論與實(shí)踐,2012,18(11):1047-1048.
[2]Nori S,Okada Y,Yasuda A,et al.Grafted human-induced pluripotent stem-cell-derived neurospheres promote motor functional recovery after spinal cord injury in mice[J].Proc Natl Acad Sci U SA,2011,108(40):16825-16830.
[3]Yuan T,Liao W,Feng NH,et al.Human induced pluripotent stem cell-derived neural stem cells survive,migrate,differentiate,and improve neurologic function in a rat model of middle cerebral artery occlusion[J].Stem Cell Res Ther,2013,4(3):73-83.
[4]楊永軒,郭宗成,賈子善.神經(jīng)干細(xì)胞與腦梗死康復(fù)[J].中國(guó)康復(fù)理論與實(shí)踐,2007,13(12):1137-1140.
[5]Chen H,Qian K,Du ZW,et al.Modeling ALS with iPSCs reveals that mutant SOD1 misregulates neurofilament balance in motor neurons[J].Cell Stem Cell,2014,14(6):796-809.
[6]Sareen D,O'Rourke JG,Meera P,et al.Targeting RNA foci in iPSC-derived motor neurons from ALS patients with a C9ORF72 repeat expansion[J].Sci Transl Med,2013,5(208):208ra149.
[7]Nizzardo M,Simone C,Rizzo F,et al.Minimally invasive transplantation of iPSC-derived ALDHhiSSCloVLA4+neural stem cells effectively improves the phenotype of an amyotrophic lateral sclerosis model[J].Hum Mol Genet,2014,23(2):342-354.
[8]Sareen D,Gowing G,Sahabian A,et al.Human induced pluripotent stem cells are a novel source of neural progenitor cells(iNPCs)that migrate and integrate in the rodent spinal cord[J].J Comp Neurol,2014,522(12):2707-2728.
[9]Cobo F,Navarro JM,Herrera MI,et al.Electron microscopy reveals the presence of viruses in mouse embryonic fibroblasts but neither in human embryonic fibroblasts nor in human mesenchymal cells used for hESC maintenance:toward an implementation of microbiological quality assurance program in stem cell banks[J].Cloning Stem Cells,2008,10(1):65-74.
[10]Kubikova I,Konecna H,Sedo O,et al.Proteomic profiling of human embryonic stem cell-derived microvesicles reveals a risk of transfer of proteins of bovine and mouse origin[J].Cytotherapy,2009,11(3):330-340.
[11]Desai N,Rambhia P,Gishto A.Human embryonic stem cell cultivation:historical perspective and evolution of xeno-free culture systems[J].Reprod Biol Endocrinol,2015,13(1):9-24.
[12]Villa-Diaz LG,Ross AM,Lahann J,et al.Concise review:The evolution of human pluripotent stem cell culture:from feeder cells to synthetic coatings[J].Stem Cells,2013,31(1):1-7.
[13]Du ZW,Chen H,Liu H,et al.Generation and expansion of highly pure motor neuron progenitors from human pluripotent stem cells[J].Nat Commun,2015,6:6626.
[14]劉堯,楊明,王惠,等.γ射線預(yù)處理制備胚胎干細(xì)胞滋養(yǎng)層的實(shí)驗(yàn)研究[J].醫(yī)學(xué)研究雜志,2010,39(4):33-37.
[15]Ravanelli AM,Appel B.Motor neurons and oligodendrocytes arise from distinct cell lineages by progenitor recruitment[J].Genes Dev,2015,29(23):2504-2515.
[16]Lu QR,Sun T,Zhu Z,et al.Common developmental requirement for Olig function indicates a motor neuron/oligodendrocyte connection[J].Cell,2002,109(1):75-86.
[17]Zhou Q,Anderson DJ.The bHLH transcription factors OLIG2 and OLIG1 couple neuronal and glial subtype specification[J].Cell,2002,109(1):61-73.
[18]Gong J,Sagiv O,Cai H,et al.Effects of extracellular matrix and neighboring cells on induction of human embryonic stem cells into retinal or retinal pigment epithelial progenitors[J].Exp Eye Res,2008,86(6):957-965.
[19]Shah NM,Marchionni MA,Isaacs I,et al.Glial growth factor restricts mammalian neural crest stem cells to a glial fate[J].Cell,1994,77(3):349-360.
[20]Martin MJ,Muotri A,Gage F,et al.Human embryonic stem cells express an immunogenic nonhuman sialic acid[J].Nat Med,2005,11(2):228-232.
[21]Ding Y,Yang H,Yu L,et al.Feeder-free and xeno-free culture of human pluripotent stem cells using UCBS matrix[J].Cell Biol Int,2015,39(10):1111-1119.
[22]Zou Q,Wu M,Zhong L,et al.Development of a xeno-free feeder-layer system from human umbilical cord mesenchymal stem cells for prolonged expansion of human induced pluripotent stem cells in culture[J].PLoS One,2016,11(2):e0149023.
[23]Vuoristo S,Toivonen S,Weltner J,et al.A novel feeder-free culture system for human pluripotent stem cell culture and induced pluripotent stem cell derivation[J].PLoS One,2013,8(10):e76205.
[24]Pijuan-Galitó S,Tamm C,Schuster J,et al.Human serum-derived protein removes the need for coating in defined human pluripotent stem cell culture[J].Nat Commun,2016,7:12170.
[25]Kühl SJ,Kühl M.On the role of Wnt/β-catenin signaling in stem cells[J].Biochim BiophysActa,2013,1830(2):2297-2306.
[26]Kelly KF,Ng DY,Jayakumaran G,et al.β-catenin enhances Oct-4 activity and reinforces pluripotency through a TCF-independent mechanism[J].Cell Stem Cell,2011,8(2):214-227.
[27]鄧?yán)谟?林戈,盧光琇.經(jīng)典飼養(yǎng)層細(xì)胞Wnt表達(dá)的差異及其對(duì)人胚胎干細(xì)胞Wnt/β-Catenin信號(hào)通路的影響[J].激光生物學(xué)報(bào),2016,25(5):423-430.