王秉鈞,王先坤,晏波,李紹平
蘭州大學(xué)第二醫(yī)院急救中心,甘肅 蘭州,730030
β-欖香烯對(duì)人胰腺癌Panc-1細(xì)胞凋亡的影響
王秉鈞,王先坤,晏波,李紹平
蘭州大學(xué)第二醫(yī)院急救中心,甘肅 蘭州,730030
目的觀察β-欖香烯對(duì)人胰腺癌Panc-1細(xì)胞凋亡的影響,探討其作用機(jī)制。方法β-欖香烯濃度設(shè)置為10、20、40、80、160 μg/mL,作用于體外培養(yǎng)的Panc-1細(xì)胞24、48、72 h。臺(tái)盼藍(lán)拒染法檢測(cè)Panc-1細(xì)胞抑制率;TUNEL法檢測(cè)Panc-1細(xì)胞凋亡;Hoechst33258熒光染色觀察Panc-1細(xì)胞核變化;ELISA檢測(cè)Panc-1細(xì)胞Caspase-3、8、9活性;Western blot檢測(cè)Panc-1細(xì)胞Fas、FasL、細(xì)胞色素C(Cyt c)、凋亡誘導(dǎo)因子(AIF)蛋白表達(dá)。結(jié)果與對(duì)照組比較,β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞24、48、72 h,Panc-1細(xì)胞抑制率明顯增加(P<0.05,P<0.01),細(xì)胞凋亡率明顯增加(P<0.01,P<0.001),并呈時(shí)間/濃度依賴(lài)性;β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞72 h,Panc-1細(xì)胞核可見(jiàn)明顯碎裂,染色質(zhì)濃縮,呈強(qiáng)藍(lán)色熒光,形成凋亡小體;β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞48 h,Caspase-3、8、9活性明顯增加(P<0.05,P<0.01),F(xiàn)as、FasL、Cyt c及AIF蛋白表達(dá)明顯增強(qiáng)(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。結(jié)論β-欖香烯能夠抑制 Panc-1細(xì)胞增殖、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,其可能激活細(xì)胞內(nèi)死亡受體途徑及線粒體凋亡途徑發(fā)揮抗腫瘤作用。
β-欖香烯;胰腺癌;Panc-1細(xì)胞;細(xì)胞凋亡
雖然胰腺癌發(fā)病率僅占所有癌癥的 2.8%,但其侵襲性強(qiáng)、預(yù)后差、死亡率高[1]。欖香烯是從姜科植物溫郁金中提取的有效成分。β-欖香烯注射液是由我國(guó)自行研發(fā)的抗腫瘤藥物,其抗腫瘤作用主要機(jī)制包括誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡、阻滯細(xì)胞周期及放化療增敏作用、逆轉(zhuǎn)腫瘤細(xì)胞多藥耐藥、抗腫瘤轉(zhuǎn)移、提高機(jī)體免疫力等[2]。由于β-欖香烯具有抗腫瘤譜廣、作用高效、毒副作用小等特點(diǎn)[3],臨床上已用于膠質(zhì)瘤、乳腺癌、肝癌、卵巢癌、胃癌、大腸癌等惡性腫瘤的治療。本實(shí)驗(yàn)以胰腺癌Panc-1細(xì)胞株為模型,觀察 β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞凋亡的影響,探討其作用機(jī)制。
1.1細(xì)胞
人胰腺癌Panc-1細(xì)胞株,中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。
1.2藥物
β-欖香烯注射液,大連遠(yuǎn)大制藥有限公司,批號(hào)140623-2。
1.3試劑
10%胎牛血清,DMEM培養(yǎng)基(GIBCO公司);四甲基偶氮唑藍(lán)(MTT)、二甲基亞砜(DMSO)及臺(tái)盼藍(lán)染色檢測(cè)試劑盒,碧云天生物研究所;Caspase-活性檢測(cè)試劑盒,Hoechst33258染色液,武漢博士德生物制品有限公司;抗Fas、FasL、細(xì)胞色素C(Cyt c)及凋亡誘導(dǎo)因子(AIF)鼠抗抗體,美國(guó) Santa Cruz公司。
1.4儀器
IX51熒光顯微鏡(日本Olympus 公司),Spectra Mr型全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀(美國(guó)DYNEX公司),Z-323高速低溫離心機(jī)(德國(guó)HERMLE公司),EPICS XL流式細(xì)胞儀(美國(guó)COULTER公司)。
2.1細(xì)胞培養(yǎng)
Panc-1細(xì)胞用含10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基于37 ℃、5%CO2孵育箱中孵育,常規(guī)方法培養(yǎng)細(xì)胞。以對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。
2.2臺(tái)盼藍(lán)拒染法檢測(cè)Panc-1細(xì)胞抑制率
實(shí)驗(yàn)分為藥物組和對(duì)照組。當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)期時(shí),棄去舊培養(yǎng)液,37 ℃預(yù)熱的PBS洗3次,0.25%胰酶消化,以新鮮培養(yǎng)液制細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞密度5×104/孔,接種于96孔培養(yǎng)板,5%CO2、37 ℃細(xì)胞孵育箱中培養(yǎng) 24 h。棄去培養(yǎng)液,藥物組給予含 β-欖香烯的新鮮培養(yǎng)液,藥物終濃度為10、20、40、80、160 μg/mL。對(duì)照組予等體積新鮮培養(yǎng)液,每個(gè)濃度設(shè)置6個(gè)復(fù)孔。分別置孵育箱繼續(xù)培養(yǎng)24、48、72 h。收集細(xì)胞,臺(tái)盼藍(lán)染色5 min,細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)胞抑制率[(1-藥物組OD值÷對(duì)照組OD值)× 100%]。β-欖香烯濃度設(shè)置參考文獻(xiàn)[4]。所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。
2.3TUNEL法檢測(cè)細(xì)胞凋亡率
實(shí)驗(yàn)分組、細(xì)胞接種及給藥方法同“2.2”項(xiàng)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期Panc-1細(xì)胞接種于12孔板中,5%CO2、37 ℃孵育24 h,藥物組β-欖香烯終濃度為10、20、 40、80、160 μg/m,繼續(xù)培養(yǎng)24、48、72 h,棄去培養(yǎng)液,PBS沖洗3次,0.25%胰酶消化,得細(xì)胞懸液,1500 r/min離心5 min,收集細(xì)胞,4%多聚甲醛固定1 h,用含0.1%Triton X-100 PBS重懸細(xì)胞,冰浴孵育5 min。按照試劑盒說(shuō)明書(shū)采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。
2.4Hoechst33258熒光染色法觀察細(xì)胞核的變化
實(shí)驗(yàn)分組、細(xì)胞接種及給藥方法同“2.2”項(xiàng)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期Panc-1細(xì)胞接種于6孔板中,5%CO2、37 ℃孵育24 h,藥物組β-欖香烯終濃度為20、40、80 μg/mL的新鮮培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。收集細(xì)胞,分散制成細(xì)胞懸液。按照Hoechst33258熒光染色說(shuō)明書(shū)進(jìn)行染色,熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞核的形態(tài)和熒光的強(qiáng)弱,采集圖像。
2.5ELISA檢測(cè)Caspase-3、8、9酶活性
實(shí)驗(yàn)分組、細(xì)胞接種及給藥方法同“2.2”項(xiàng)。接種于6孔培養(yǎng)板的Panc-1細(xì)胞置于37 ℃、5%CO2條件下孵育24 h,藥物組β-欖香烯的終濃度為20、40、80 μg/mL,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。棄去培養(yǎng)液,4 ℃預(yù)冷PBS沖洗3次,加入適量裂解液冰浴30 min。細(xì)胞刮子刮下細(xì)胞,置預(yù)冷離心管中,4 ℃、20 000 r/min離心15 min,取上清液存于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。所測(cè)酶活性以Caspase活性增加的百分比表示(藥物組OD值÷對(duì)照組OD值×100%)。嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
2.6Western blot檢測(cè)Fas、FasL、細(xì)胞色素C及凋亡誘導(dǎo)因子蛋白表達(dá)
實(shí)驗(yàn)分組、細(xì)胞接種及給藥方法同“2.2”項(xiàng)。細(xì)胞加入預(yù)冷的適量細(xì)胞裂解液(100~150 μL/孔,含蛋白酶抑制劑),冰浴裂解30 min,收集細(xì)胞,4 ℃、20 000 r/min離心25 min,取上清液,BCA法測(cè)定總蛋白濃度,-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?0%SDS-PAGE凝膠電泳后,轉(zhuǎn)移至PVDF膜,一抗Fas、FasL、Cyt c 及AIF抗體1∶1000稀釋?zhuān)? ℃過(guò)夜,二抗(1∶1000稀釋?zhuān)┦覝胤跤? h,ECL法顯色。
4.1β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞增殖的影響
不同濃度β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞24、48、72 h后,與對(duì)照組比較,藥物組Panc-1細(xì)胞抑制率明顯增加(P<0.05,P<0.01),并呈時(shí)間-濃度依賴(lài)性,兩者間無(wú)交互作用(P>0.01)。結(jié)果見(jiàn)表1。
表1 各組Panc-1細(xì)胞不同時(shí)點(diǎn)Panc-1細(xì)胞抑制率比較(±s,%)
表1 各組Panc-1細(xì)胞不同時(shí)點(diǎn)Panc-1細(xì)胞抑制率比較(±s,%)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01
組別 n 濃度/(μg/mL) 24 h 48 h 72 h對(duì)照組 3 0 0 0 0藥物組 3 10 7.31 18.26 29.25*3 20 11.68* 29.65* 38.81*3 40 25.45* 40.57* 48.68**3 80 33.68** 50.32** 61.01**3 160 39.32** 57.61** 69.26**
4.2β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞凋亡的影響
不同濃度β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞24、48、72 h后,與對(duì)照組比較,藥物組細(xì)胞凋亡率增加(P<0.01,P<0.001),并呈時(shí)間-濃度依賴(lài),80、160 μg/mL β-欖香烯誘導(dǎo)作用相同時(shí)間細(xì)胞凋亡率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 各組Panc-1細(xì)胞不同時(shí)點(diǎn)細(xì)胞凋亡率比較(±s,%)
表2 各組Panc-1細(xì)胞不同時(shí)點(diǎn)細(xì)胞凋亡率比較(±s,%)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01
組別 n 濃度/(μg/mL) 24 h 48 h 72 h對(duì)照組 3 0 5.38±1.36 5.94±0.90 6.79±1.32藥物組 3 10 5.35±0.99 10.26±1.25*18.56±1.29*3 20 8.32±1.01 21.18±2.18**33.40±3.24**3 40 15.66±1.13* 32.41±3.46**40.92±3.01**3 80 31.75±3.12* 40.09±3.75**51.28±3.63**3 160 30.29±4.62* 44.36±5.36**52.39±4.65**
4.3β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞核形態(tài)的影響
經(jīng)Hoechst33258熒光染色后,熒光顯微鏡下可見(jiàn)對(duì)照組細(xì)胞核形態(tài)完整,呈弱藍(lán)色熒光;給予欖香烯作用Panc-1細(xì)胞72 h后,細(xì)胞核可見(jiàn)明顯碎裂,染色質(zhì)濃縮并致密濃染,呈強(qiáng)藍(lán)色熒光,伴有凋亡小體出現(xiàn)。隨著藥物濃度增大,細(xì)胞凋亡發(fā)生更加明顯。結(jié)果見(jiàn)圖1。
4.4β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞Caspase-3、8、9活性的影響
Caspase-3、8、9均是細(xì)胞凋亡過(guò)程中關(guān)鍵的Caspase,20、40、80 μg/mL β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞48 h后,Caspase-3、8、9活性均顯著增加(P<0.05,P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表3。
圖1 各組Panc-1細(xì)胞核病理形態(tài)(Hoechst33258熒光染色,×200)
表3 各組Panc-1細(xì)胞Caspase-3、8、9活性比較(±s)
表3 各組Panc-1細(xì)胞Caspase-3、8、9活性比較(±s)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01
4.5β-欖香烯對(duì)Panc-1細(xì)胞Fas、FasL、細(xì)胞色素C及凋亡誘導(dǎo)因子蛋白表達(dá)的影響
20、40、80 μg/mL β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞48 h后,與對(duì)照組比較,Panc-1細(xì)胞Fas、FasL、Cyt c及AIF蛋白表達(dá)明顯增強(qiáng)(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。結(jié)果見(jiàn)圖2、表4。
圖2 各組Fas、FasL、Cyt c及AIF蛋白表達(dá)免疫印跡電泳圖
表4 各組Panc-1細(xì)胞Fas、FasL、Cyt c及AIF蛋白表達(dá)比較(±s)
表4 各組Panc-1細(xì)胞Fas、FasL、Cyt c及AIF蛋白表達(dá)比較(±s)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
對(duì)照組 3 0 0.98±0.11 0.67±0.11 1.13±0.25 0.95±0.08藥物組 3 20 1.75±0.23* 1.64±0.65** 1.98±0.65** 1.29±0.41*3 40 3.44±0.45** 4.93±0.73** 2.45±0.74** 2.67±0.91**3 80 5.86±1.18*** 7.54±0.82*** 4.65±0.64** 4.36±0.70**組別 n 濃度/(μg/mL) Fas FasL Cyt c AIF
由于β-欖香烯廣譜、高效、低毒等特點(diǎn),目前臨床上應(yīng)用于多種惡性腫瘤的治療。研究表明,β-欖香烯具有直接抗腫瘤作用,體內(nèi)外均能夠抑制肺癌細(xì)胞DNA、RNA的合成,從而抑制腫瘤細(xì)胞增殖,此作用具有一定的時(shí)間和濃度依賴(lài)性[5]。毛氏等[6]研究發(fā)現(xiàn),β-欖香烯通過(guò)下調(diào)人肝癌 HepG2細(xì)胞內(nèi)微管蛋白,從而抑制細(xì)胞內(nèi)微管的聚合,發(fā)揮增殖抑制作用。本研究發(fā)現(xiàn),不同濃度的β-欖香烯注射液作用Panc-1細(xì)胞24、48、72 h后,均有顯著的增殖抑制作用。
除抗腫瘤作用外,誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡是β-欖香烯重要的抗腫瘤作用機(jī)制之一。有研究發(fā)現(xiàn),β-欖香烯作用于膠質(zhì)瘤U87細(xì)胞后,經(jīng)流式細(xì)胞儀分析,可將細(xì)胞周期阻滯于G1/S期,此外Fas和FasL的mRNA和蛋白表達(dá)水平上升,表明 β-欖香烯通過(guò)調(diào)節(jié)Fas/FasL信號(hào)通路抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖并誘導(dǎo)凋亡。通過(guò)TUNEL法檢測(cè)細(xì)胞凋亡實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),不同濃度β-欖香烯注射液作用24、48、72 h后能顯著誘導(dǎo)Panc-1細(xì)胞凋亡;再通過(guò)Hoechst33258染色,熒光顯微鏡下觀察到細(xì)胞核碎裂濃染,染色質(zhì)濃縮,伴有凋亡小體出現(xiàn)。但是,筆者發(fā)現(xiàn),80、160 μg/mL β-欖香烯注射液在作用相同時(shí)間時(shí)誘導(dǎo)的凋亡率之間無(wú)明顯差異,可能是β-欖香烯誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡的作用與藥物濃度并不是簡(jiǎn)單的線性關(guān)系。當(dāng)藥物達(dá)到一定濃度時(shí),腫瘤細(xì)胞其他死亡方式如壞死增多,β-欖香烯誘導(dǎo)的程序性死亡即凋亡減少[2]。
有研究發(fā)現(xiàn),欖香烯能促進(jìn)人胃癌SCG-7901細(xì)胞凋亡,其機(jī)制與調(diào)節(jié)ERK/P38/MAPK信號(hào)通路表達(dá)有關(guān)[7];有研究顯示,β-欖香烯可能通過(guò)調(diào)節(jié)Fas/FasL信號(hào)通路抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞的增殖并誘導(dǎo)凋亡[8-9]。在哺乳動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)存在2條經(jīng)典的凋亡途徑:死亡受體途徑和線粒體凋亡途徑。Fas是一種跨膜蛋白,屬于腫瘤壞死因子受體超家族成員,在死亡受體途徑中,F(xiàn)as受體與Fas結(jié)合后,F(xiàn)as受體胞漿區(qū)的死亡域發(fā)生多聚化使Fas活化,活化的Fas與Fas相關(guān)死亡結(jié)構(gòu)域蛋白(FADD)連接,F(xiàn)ADD另一端與無(wú)活性的Caspase-8酶原發(fā)生交聯(lián),從而激活Caspase-8,活化的Caspase-8可以剪切并活化Caspase-3、9及其他 Caspase,進(jìn)而引起隨后的級(jí)聯(lián)反應(yīng),最終導(dǎo)致了細(xì)胞凋亡的發(fā)生。
Cyt c是第1種被發(fā)現(xiàn)的線粒體釋放促凋亡蛋白。線粒體凋亡途徑中,Cyt c從線粒體釋放是細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵步驟,這是線粒體外膜通透性增高的結(jié)果[10]。釋放到細(xì)胞漿的Cyt c與凋亡相關(guān)因子1結(jié)合并將其激活,使其形成多聚體,并促使Caspase-9與其結(jié)合形成凋亡小體,Caspase-9被激活,其進(jìn)一步激活下游的 Caspase-3,介導(dǎo)細(xì)胞凋亡。本研究發(fā)現(xiàn),20、40、80 μg/mL β-欖香烯作用Panc-1細(xì)胞48 h后,Caspase-3、8、9活性均顯著增加,F(xiàn)as、FasL、Cyt c、AIF蛋白表達(dá)明顯增強(qiáng),這可能是 β-欖香烯誘導(dǎo)Panc-1細(xì)胞凋亡從而發(fā)揮抗腫瘤作用的機(jī)制之一。
[1] ONESTI C E, ROMITI A, ROBERTO M, et al. Recent advances for the treatment of pancreatic and biliary tract cancer after first-line treatment failure[J]. Expert Review of Anti-infective Therapy,2015,15(10):1183-1198.
[2] 吳稚冰,馬勝林.β-欖香烯抗腫瘤作用的研究進(jìn)展[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2011,29(10):2255-2258.
[3] ZHANG G N, ASHBY C R, ZHANG Y K, et al. The reversal of antineoplastic drug resistance in cancer cells by β-elemene[J]. Chinese Journal of Cancer,2015,34(3):1-8.
[4] 朱郁飛,陳懇,錢(qián)俐,等.欖香烯乳對(duì)人胰腺癌細(xì)胞株 Panc-1增殖和凋亡的影響[J].江蘇醫(yī)藥,2013,39(21):2516-2519.
[5] 秦叔逵,錢(qián)軍,楊?lèi)?ài)珍,等.欖香烯乳抗肺癌細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J].腫瘤防治研究,1996,23(4):251-255.
[6] 毛雨秋,高山,付海雁,等.β-欖香烯注射液對(duì)人肝癌 HepG2細(xì)胞微管系統(tǒng)的影響[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2013,19(10):211-215.
[7] 俞耀軍,盛維為,葉海波,等.欖香烯和 PD98059誘導(dǎo)人胃癌 SCG-7901細(xì)胞株凋亡及其機(jī)制的探討[J].溫州醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2014,44(4):258-263.
[8] CHEN-LONG L, LIANG C, LIN G, et al. β-elemene induces caspase-dependent apoptosis in human glioma cells in vitro through the upregulation of Bax and Fas/FasL and downregulation of Bcl-2[J]. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention,2014,15(23):10407-10412.
[9] 明鍵光,李晨龍,蔣傳路.β-欖香烯通過(guò)Fas/FasL信號(hào)通路調(diào)控膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖和凋亡[J].哈爾濱醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2015,49(4):300-304.
[10] SINHA K, DAS J, PAL P B, et al. Oxidative stress:the mitochondria-dependent and mitochondria-independent pathways of apoptosis[J]. Archives of Toxicology,2013,87(7):1157-1180.
Effects of β-Elemene on Apoptosis of Human Pancreatic Cancer Panc-1 Cells
WANG Bing-jun,WANG Xian-kun, YAN Bo, LI Shao-ping
(Emergency Center, The Second Hospital of Lanzhou University, Lanzhou 730030, China)
Objective To investigate the effects of β-Elemene on the apoptosis of human pancreatic cancer Panc-1 cells; To discuss its mechanism of action. Methods β-Elemene (10, 20, 40, 80, 160 μg/mL) were incubated to the Panc-1 cells in vitro cultured for 24 h, 48 h and 72h, and trypan blue refusal method was used to detect cell inhibition rate;Apoptosis rate was measured by TUNEL; Hoechst33258 fluorescent staining was used to observe the changes of the nucleus. The activity of Caspase-3, 8 and 9 were detected by ELISA. Western blot was used to detect the expressions of Fas, FasL and Cyt c and AIF. Results The activity of Panc-1 cells was obviously inhibited time/concentration dependent inhibition (P<0.05, P<0.01), and the apoptosis rate increased after incubated with β-Elemene (P<0.01,P<0.001) after incubated with β-Elemene for 24 h, 48 h and 72 h; After giving β-Elemene 72 h, Panc-1 cells nucleus were broken obviously, and chromatin condensed and showed strong blue fluorescence, along with of apoptotic bodies; After incubated with β-Elemene for 48 h, Caspase-3, 8 and 9 activity significantly increased (P<0.05,P<0.01); protein expressions of Fas, FasL, Cyt c and AIF were significantly enhanced (P<0.05, P<0.01, P<0.001). Conclusion β-Elemene can inhibit Panc-1 cell proliferation, induce apoptosis, and the mechanism may be related to activating cell death receptor pathway and mitochondrial apoptosis pathway to play anti-tumor effects.
β-Elemene; pancreatic cancer; Panc-1 cells; cell apoptosis
R285.5
A
1005-5304(2016)10-0078-04
2015-12-07)
(
2015-12-30;編輯:華強(qiáng))
甘肅省自然科學(xué)基金(1506RJZA251);蘭州市科技計(jì)劃項(xiàng)目(2012-1-32)
李紹平,E-mail:lzulsp@163.com
DOl:10.3969/j.issn.1005-5304.2016.10.018