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        丹參酮ⅡA磺酸鈉注射液對鎘致腎損傷保護(hù)作用的實(shí)驗(yàn)研究*

        2015-01-04 07:42:38魏長征呂曉云宋連猛裴海霞張倩倩
        中國中醫(yī)急癥 2015年6期
        關(guān)鍵詞:丹參酮造模皮質(zhì)

        魏長征 呂曉云宋連猛 裴海霞 張倩倩 楊 杰

        (蘭州大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院中西醫(yī)結(jié)合研究所,甘肅 蘭州 730000)

        ·研究報(bào)告·

        丹參酮ⅡA磺酸鈉注射液對鎘致腎損傷保護(hù)作用的實(shí)驗(yàn)研究*

        魏長征 呂曉云△宋連猛 裴海霞 張倩倩 楊 杰

        (蘭州大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院中西醫(yī)結(jié)合研究所,甘肅 蘭州 730000)

        目的觀察丹參酮ⅡA磺酸鈉注射液對鎘致腎損傷的保護(hù)作用并探討其可能的作用機(jī)制。方法40只Wistar大鼠隨機(jī)分為空白組、模型組、亞硒酸鈉組(0.05 mg/kg)、丹參酮低(4 mg/kg)、高(8 mg/kg)劑量組。鎘染毒4周后,觀察大鼠基本狀況,檢測大鼠血肌酐(Scr)、血尿素氮(BUN)、血清超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)及其尿β2-微球蛋白(β2-MG)。于造模成功后,空白組、模型組給予腹腔注射0.9%氯化鈉注射液,亞硒酸鈉組給予腹腔注射亞硒酸鈉溶液,丹參酮低、高劑量組分別給予4 mg/kg和8 mg/kg劑量丹參酮ⅡA磺酸鈉注射液治療。檢測血液中的Scr、BUN、SOD、MDA、尿β2-MG含量,腎皮質(zhì)、血、尿含鎘量,腎臟皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率及Bax蛋白表達(dá)水平。結(jié)果染毒后模型組、亞硒酸鈉組、丹參酮低劑量組、丹參酮高劑量組大鼠體質(zhì)量、Scr、BUN、尿β2-MG、SOD及MDA與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。采用丹參酮ⅡA-磺酸鈉治療后,丹參酮低劑量組、丹參酮高劑量組與模型組相比,血Scr、BUN、尿β2-MG、腎、血含鎘量、MDA、SOD含量、腎臟皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率及Bax蛋白表達(dá)差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。結(jié)論丹參酮低、高劑量組對鎘致腎臟損傷具有保護(hù)作用,其保護(hù)機(jī)制可能與抗氧化應(yīng)激有關(guān)。

        丹參酮 Ⅱ A磺酸鈉 鎘 腎損傷 凋亡 抗氧化應(yīng)激

        鎘(Cd)是原子序列為48的一種重金屬,可通過污染土壤、水源、空氣的方式,經(jīng)口、鼻、皮膚等途徑在人體內(nèi)蓄積,對肝、腎、肺等器官產(chǎn)生損傷。鎘在人體內(nèi)排泄緩慢,其半衰期約10~30年,為已知在體內(nèi)最易蓄積的毒物[1-2]。鎘進(jìn)入人體后,約1/3~1/2的鎘蓄積于肝和腎[3],其中腎臟是低劑量慢性鎘中毒最重要的受損器官,研究證實(shí)鎘誘導(dǎo)的腎損傷的主要作用部位是腎近曲小管,會影響腎小管的重吸收功能[4]。一般認(rèn)為鎘所致的腎損傷是不可逆的,目前無有效的治療方法[5],但有業(yè)者認(rèn)為隨著鎘的接觸量和時間的減少或停止,腎損傷可以逐漸恢復(fù)[6]。究其腎毒性的機(jī)制,可能與氧化損傷、鎘-鈣的相互作用、引發(fā)腎臟細(xì)胞凋亡、誘導(dǎo)基因異常表達(dá)等方面有關(guān)。鑒于鎘中毒的研究中,硒可有效拮抗鎘致腎損傷,但由于其治療量與中毒量很接近,尚不能滿足臨床應(yīng)用。近年研究發(fā)現(xiàn),丹參酮ⅡA磺酸鈉注射液(STS)具有改善腎臟微循環(huán)、保護(hù)腎臟血管內(nèi)皮細(xì)胞、清除氧自由基、抗脂質(zhì)氧化、防治腎臟小球硬化等作用[7]。但有關(guān)STS防治鎘致腎損傷研究未見報(bào)道,基于以上背景,筆者就STS對鎘致腎損傷的作用及其機(jī)制進(jìn)行研究。現(xiàn)報(bào)告如下。

        1 材料與方法

        1.1 試劑與藥物 STS(上海第一生物藥業(yè)有限公司),氯化鎘(分析純,天津市光復(fù)科技發(fā)展有限公司),亞硒酸鈉(分析純,上海中秦化學(xué)試劑有限公司)。血清超氧化物歧化酶(SOD)、丙二酫(MDA)試劑盒(南京建成生物工程研究所)。血肌酐(Scr)、尿素氮(BUN)試劑盒(南京建成生物工程研究所)。β2-微球蛋白(蘭大一院送檢),Bax蛋白一抗兔抗大鼠(bioworld公司)。清潔級wistar大鼠40只,雌雄各半,體質(zhì)量(160±20)g,由蘭州大學(xué)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供,合格證號:SCXK(甘)2009-0004。原子吸收法分光光度計(jì)石(德國耶拿分析儀器股份公司);721分光光度計(jì) (上海菁華科技儀器有限公司);全自動生化分析儀(型號Cobas c31);流式細(xì)胞儀(美國Beekman coulter公司);顯微鏡(德國Olympus公司);超凈工作臺(蘇凈集團(tuán)安泰公司)。

        1.2 分組與給藥 40只清潔級Wistar大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)2周后,按隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為空白組、模型組、亞硒酸鈉組、丹參酮低劑量組、丹參酮高劑量組,每組8只,空白組腹腔注射0.9%氯化鈉注射液,其余組腹腔注射氯化鎘溶液1.4 mg/kg,每周7次,共4周。造模4周后,觀察大鼠基本狀況,檢測大鼠Scr、BUN、SOD、MDA及尿β2-MG含量。造模成功后,空白組、模型組給予腹腔注射0.9%氯化鈉注射液,亞硒酸鈉組給予腹腔注射亞硒酸鈉溶液0.05 mg/kg,丹參酮低、高劑量組分別給予STS 4 mg/kg、8 mg/kg治療。實(shí)驗(yàn)?zāi)┦杖⊙?、尿,并留取腎組織,檢測Scr、BUN,SOD、MDA、尿β2-MG、腎皮質(zhì)、血、尿鎘含量、腎皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率及皮質(zhì)Bax蛋白表達(dá)水平。

        1.3 標(biāo)本采集與檢測 實(shí)驗(yàn)過程中,觀察大鼠一般狀況,每隔2周稱量大鼠體質(zhì)量,大鼠處死后取腎臟并稱重,計(jì)算腎臟質(zhì)量系數(shù)(mg/g)=(左側(cè)腎臟質(zhì)量+右側(cè)腎臟質(zhì)量)/2(mg)/大鼠體質(zhì)量(g)。分別于大鼠造模后、處死前用代謝籠收集24 h尿液,大鼠禁食禁水,測量尿量;隔天禁食不禁水,收集尿液-80℃冰箱保存待測β2-MG及鎘含量。分別于大鼠造模后、處死前,在乙醚麻醉下進(jìn)行眼底靜脈叢采集血樣,靜置1 h后,離心機(jī)轉(zhuǎn)速3000 rpm離心10 min,按試劑盒說明使用全自動生化分析儀測定Scr、BUN含量,使用分光光度計(jì)測定SOD、MDA含量,使用原子吸收法分光光度計(jì)石墨爐法檢測血鎘含量。于治療后,取血后行心臟0.9%氯化鈉注射液灌流,迅速摘取右側(cè)腎臟置于超凈工作臺,使用剪碎法收集細(xì)胞懸液,行流式細(xì)胞儀凋亡率檢測。迅速摘取左側(cè)腎臟,剝?nèi)グ?,行腎門縱切,一部分腎臟組織經(jīng)4%多聚甲醛溶液固定,石蠟包埋,3 μm切片,免疫組化S-P法檢測腎組織Bax蛋白表達(dá)。結(jié)果判斷方法:每組8張切片,每片切片在400倍視野下隨機(jī)選擇4個視野,陽性細(xì)胞分為弱陽性和強(qiáng)陽性,弱陽性指淺染的棕黃色或黃色,強(qiáng)陽性指較深的棕黃色或黃色,分別計(jì)算Bax弱陽性表達(dá)率和強(qiáng)陽性表達(dá)率,然后將4個視野的結(jié)果求平均值。另一部分腎臟組織剪取皮質(zhì)置于40 mL三角燒瓶中,加4 mL混合酸,燒瓶口覆以牛皮紙,浸泡過夜,至消化完全,置于電熱板上加熱,直至混合酸完全蒸發(fā),加入5 mL蒸餾水,再次置于電熱板上進(jìn)行驅(qū)酸,最后稀釋至10 mL,設(shè)定石墨爐法的工作條件,檢測腎皮質(zhì)鎘含量。

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS19.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)數(shù)資料以(±s)表示,各組采用單因素方差(one-way ANOVA)分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 各組大鼠治療后體質(zhì)量比較 見表1。經(jīng)治療后,模型組與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),但與亞硒酸鈉、低、高劑量組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表1 各組大鼠不同階段體質(zhì)量、增加的體質(zhì)量比較(g,±s)

        表1 各組大鼠不同階段體質(zhì)量、增加的體質(zhì)量比較(g,±s)

        與空白對照組比較,*P<0.05。

        組別 n空白組 8模型組 8亞硒酸鈉組 8初始體質(zhì)量 造模后體質(zhì)量 治療后體質(zhì)量 體質(zhì)量增加1 5 5 . 1 0 ± 1 2 . 3 0 2 0 8 . 1 0 ± 5 3 . 0 0 2 4 4 . 2 0 ± 5 8 . 9 0 8 3 . 8 0 ± 4 4 . 4 0 1 5 0 . 5 0 ± 8 . 5 0 1 6 4 . 0 0 ± 1 6 . 0 0 1 9 2 . 2 0 ± 3 4 . 1 0*4 0 . 2 0 ± 3 7 . 1 0*1 6 0 . 7 0 ± 1 6 . 8 0 1 6 5 . 3 0 ± 2 1 . 6 0 2 0 4 . 9 0 ± 2 5 . 8 0 4 8 . 6 0 ± 3 4 . 8 0丹參酮低劑量組 8 1 6 5 . 0 0 ± 1 9 . 1 0 1 7 4 . 9 0 ± 2 7 . 5 0 2 2 4 . 8 0 ± 3 1 . 3 0 6 1 . 3 0 ± 3 4 . 5 0丹參酮高劑量組 8 1 4 9 . 1 0 ± 8 . 5 0 1 6 7 . 9 0 ± 1 8 . 9 0 2 1 8 . 1 0 ± 3 2 . 1 0 6 9 . 0 0 ± 4 9 . 3 0

        2.2 各組大鼠腎臟質(zhì)量系數(shù)、尿量比較 見表2。大鼠腎臟質(zhì)量系數(shù)模型組、亞硒酸鈉組與空白組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01或P<0.05),丹參酮低、高劑量組與空白組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),丹參酮高劑量組與模型組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。24 h尿量結(jié)果統(tǒng)計(jì)顯示:治療后模型組與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),丹參酮低、高劑量組與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        2.3 各組大鼠SOD、MDA含量比較 見表3。造模后模型組、亞硒酸鈉組、丹參酮低、高劑量組血清SOD、MDA含量與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P<0.01),治療后丹參酮低、高劑量組血清SOD、MAD含量與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01或P<0.05)。

        表2 各組大鼠腎臟質(zhì)量系數(shù)、24 h尿量比較(±s)

        表2 各組大鼠腎臟質(zhì)量系數(shù)、24 h尿量比較(±s)

        與空白組比較,*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較,△P<0.01,△△P<0.05。下同。

        腎臟質(zhì)量系數(shù)(m g / g)組別n 治療后2 4 h尿量(m L)造模后3 . 4 1 5 ± 0 . 1 6 2 4 . 7 3 ± 1 . 1 2 4 . 2 8 9 ± 0 . 6 5 9**6 . 4 3 ± 0 . 4 2**亞硒酸鈉組 8 5 . 7 7 ± 1 . 1 7空白組 8 4 . 8 9 ± 1 . 3 7模型組 8 6 . 7 1 ± 0 . 5 6**3 . 9 7 2 ± 0 . 2 8 1*6 . 2 3 ± 0 . 3 5**丹參酮低劑量組 8 3 . 8 4 4 ± 0 . 2 9 3 6 . 2 6 ± 0 . 4 2**5 . 1 8 ± 0 . 6 8△丹參酮高劑量組 8 3 . 6 8 9 ± 0 . 3 9 7△△6 . 3 9 ± 0 . 4 9**5 . 1 6 ± 0 . 5 6△

        表3 各組大鼠造模后與治療后SOD、MDA比較(±s)

        表3 各組大鼠造模后與治療后SOD、MDA比較(±s)

        M D A(μ m o l / L)造模后 治療后5 . 3 8 ± 0 . 9 4 5 . 9 8 ± 1 . 1 3 1 3 . 4 3 ± 1 . 0 5*1 1 . 1 0 ± 1 . 9 2亞硒酸鈉組 8 2 1 3 . 8 8 ± 1 5 . 7 0*2 3 7 . 6 0 ± 1 2 . 7 0△1 2 . 7 5 ± 1 . 2 7*7 . 1 4 ± 1 . 2 0△△丹參酮低劑量組 8 2 1 1 . 1 3 ± 1 2 . 9 3*2 3 7 . 1 4 ± 1 5 . 9 3△1 3 . 2 1 ± 1 . 4 1*7 . 9 3 ± 1 . 6 3△△丹參酮高劑量組 8 2 1 0 . 6 3 ± 9 . 8 7*2 5 0 . 5 0 ± 1 7 . 0 6△△1 3 . 2 6 ± 0 . 8 2*7 . 0 5 ± 1 . 6 6△△組別 n空白組 8模型組 8 S O D(U / m L)造模后 治療后2 7 2 . 6 3 ± 1 4 . 0 2 2 6 1 . 8 6 ± 2 3 . 4 9 2 0 9 . 8 8 ± 1 7 . 9 6*2 1 5 . 5 7 ± 1 6 . 2 9

        2.4 各組大鼠Scr、BUN、β2-MG比較 見表4。治療后Scr、BUN、β2-MG丹參酮高劑量組與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01或P<0.05),亞硒酸鈉組、丹參酮低、高劑量組BUN含量與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

        表4 各組大鼠造模后與治療后Scr、BUN、β2-MG比較(±s)

        表4 各組大鼠造模后與治療后Scr、BUN、β2-MG比較(±s)

        S c r(μ m o l / L) B U N(m m o l / L) β 2 -M G(μ g / L)造模后 治療后 造模后 治療后 造模后 治療后空白組 8 3 2 . 5 ± 1 . 8 3 3 . 9 ± 2 . 4 4 . 4 3 ± 0 . 2 9 4 . 5 9 ± 0 . 2 1 1 8 . 4 ± 0 . 6 1 8 . 8 ± 0 . 4模型組 8 5 7 . 4 ± 3 . 1 5 2 . 0 ± 4 . 4 6 . 9 9 ± 0 . 4 8 6 . 9 2 ± 0 . 5 6 2 9 . 0 ± 1 . 0 2 6 . 4 ± 1 . 1亞硒酸鈉組 8 5 6 . 9 ± 2 . 9 4 6 . 5 ± 2 . 9 6 . 9 6 ± 0 . 4 0 5 . 7 9 ± 0 . 3 9△△2 8 . 9 ± 1 . 0 2 3 . 7 ± 0 . 7丹參酮低劑量組 8 5 7 . 0 ± 2 . 7 4 9 . 3 ± 3 . 0 6 . 8 7 ± 0 . 2 2 5 . 5 9 ± 0 . 3 1△△2 7 . 5 ± 0 . 7 2 3 . 8 ± 1 . 2丹參酮高劑量組 8 5 5 . 4 ± 2 . 7 4 4 . 4 ± 4 . 1△7 . 0 2 ± 0 . 3 7 5 . 0 7 ± 0 . 4 3△△3 0 . 3 ± 1 . 0 2 1 . 8 ± 0 . 7△組別 n

        2.5 各組大鼠細(xì)胞凋亡率比較 見表5。模型組與空白組相比早、晚、總凋亡率明顯升高(P<0.01),亞硒酸鈉組晚、總凋亡率與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P<0.05),但丹參酮低、高劑量組與空白組早、晚、總凋亡率差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。其余各組早期凋亡率和總凋亡率與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),丹參酮高劑量組與模型組晚期凋亡率差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        表5 各組腎皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率比較(%,±s)

        表5 各組腎皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率比較(%,±s)

        與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05,△△P<0.01。下同。

        組別 n 總凋亡率空白組 8 1 . 5 3 ± 0 . 2 9模型組 8 2 2 . 3 2 ± 2 . 9 7**亞硒酸鈉組 8 9 . 8 7 ± 6 . 1 3△△早期凋亡率 晚期凋亡率0 . 0 4 ± 0 . 0 4 1 . 5 0 ± 0 . 2 6 9 . 0 5 ± 2 . 3 0**1 3 . 2 6 ± 0 . 8 6**1 . 2 5 ± 0 . 8 8△△8 . 6 2 ± 2 . 2 9丹參酮低劑量組 8 8 . 2 6 ± 6 . 1 3 0 . 8 5 ± 0 . 8 5 7 . 4 1 ± 5 . 3 0丹參酮高劑量組 8 0 . 5 2 ± 0 . 4 9 5 . 5 5 ± 3 . 9 7 6 . 0 7 ± 4 . 4 4△

        2.6 各組血、尿、腎皮質(zhì)鎘含量比較 見表6。血、腎皮質(zhì)含鎘量的模型組、亞硒酸鈉組、丹參酮低、高劑量組及尿含鎘量的模型組、亞硒酸鈉組含鎘量與空白組比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。腎皮質(zhì)含鎘量高劑量組與空白組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。血含鎘量丹參酮高劑量組及腎皮質(zhì)含鎘量亞硒酸鈉組、丹參酮低、高劑量組與模型組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。尿含鎘量亞硒酸鈉組、丹參酮低、高劑量組與模型組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表6 各組大鼠血、尿、腎皮質(zhì)鎘含量比較(±s)

        表6 各組大鼠血、尿、腎皮質(zhì)鎘含量比較(±s)

        組別 n 腎皮質(zhì)含鎘量(μ g / g)空白組 8 1 . 3 8 5 5 ± 1 . 3 3 1 1模型組 8 5 2 . 6 8 1 ± 5 . 0 3 4 7*亞硒酸鈉組 8 2 5 . 8 2 6 ± 1 2 . 3 0 5 4△△血含鎘量(μ g / L)尿含鎘量(μ g / L)0 . 0 4 9 9 ± 0 . 0 0 4 8 0 . 0 0 1 6 ± 0 . 0 0 0 2 1 . 3 3 9 3 ± 0 . 7 2 6 1*0 . 0 2 2 5 ± 0 . 0 1 1 7*0 . 9 6 7 2 ± 0 . 6 9 1 4 0 . 0 2 0 4 ± 0 . 0 1 7 9丹參酮低劑量組 8 3 1 . 5 4 2 ± 4 . 3 2 9 1△△0 . 7 4 2 9 ± 0 . 7 4 2 9△0 . 0 1 3 3 ± 0 . 0 1 0丹參酮高劑量組 8 0 . 6 9 7 0 ± 0 . 2 2 2 7△△0 . 0 1 6 6 ± 0 . 0 1 4 2 2 3 . 2 9 8 ± 1 2 . 5 8 9 9△△

        2.7 兩組腎組織免疫組化比較 腎皮質(zhì)Bax蛋白弱陽性表達(dá)結(jié)果顯示,空白組、丹參酮ⅡA高劑量組與鎘染毒模型組相比較,鎘染毒模型組Bax蛋白弱陽性表達(dá)率為(22.80±1.90)%,分別強(qiáng)于空白組與丹參酮高組的(7.90±1.30)%、(18.50±6.20)%(P<0.01)。而亞硒酸鈉組、丹參酮ⅡA低劑量組與鎘染毒模型組相比,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。腎皮質(zhì)Bax蛋白強(qiáng)陽性表達(dá)結(jié)果顯示,鎘染毒模型組Bax蛋白強(qiáng)陽性表達(dá)率為(18.30±1.70)%,并且明顯高于其他組(P<0.01)。

        3 討 論

        上述鎘致腎損傷機(jī)制中,氧化損傷的機(jī)制研究最為明確。大量研究顯示,大鼠鎘染毒后,其功能損傷明顯,超微結(jié)構(gòu)出現(xiàn)病理損傷,線粒體、溶酶體等細(xì)胞器嚴(yán)重受損,血清及腎臟中SOD、GSH-Px活性明顯下降,氧自由基生成顯著升高[8],這是由于鎘可以通過增強(qiáng)脂質(zhì)過氧化的產(chǎn)生及改變細(xì)胞內(nèi)的抗氧化系統(tǒng)的方式,從而誘導(dǎo)不同組織的氧化損傷[9],提示在鎘致腎臟損傷的過程中,氧自由基的生成及由此引起的脂質(zhì)氧化反應(yīng)可能起著重要作用。

        丹參具有活血化瘀等功效。近年對丹參藥理作用的研究取得了較大突破,研究報(bào)道丹參具有清除自由基和抗脂質(zhì)氧化、減輕缺血組織再灌注損傷、抗肝腎損傷及肝腎間質(zhì)纖維化等作用[10]。丹參酮ⅡA磺酸鈉作為從丹參中提取出的主要有效的藥理成分,已被證實(shí)具有較強(qiáng)的清除自由基和抗脂質(zhì)氧化作用。丹參酮ⅡA是一種有效的細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物與DNA互相作用的抑制藥,其保護(hù)機(jī)制可能與清除脂類自由基,阻斷脂質(zhì)過氧化的鏈?zhǔn)椒磻?yīng),從而抑制DNA加成物的生成以減少細(xì)胞毒性有關(guān)[11]。

        本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,染毒后大鼠體質(zhì)量明顯低于空白組。血清SOD顯著降低,血清MDA明顯升高,SOD是生物體內(nèi)重要的抗氧化酶,可以清除氧自由基,進(jìn)而阻斷氧自由基對細(xì)胞的損傷,并可恢復(fù)氧自由基對細(xì)胞造成的損傷。MDA是自由基引發(fā)的脂質(zhì)過氧作用的最終分解產(chǎn)物,其含量可間接反映機(jī)體脂質(zhì)過氧化的水平,血清SOD、MDA含量的異常,提示了氧化損傷可能是鎘致腎臟損傷的重要機(jī)制之一。Scr、BUN都是主要經(jīng)由腎小球?yàn)V過排出體外,Scr、BUN升高提示腎臟實(shí)質(zhì)受到損傷,其機(jī)制可能與鎘致腎小管上皮細(xì)胞損傷有關(guān),腎小管上皮損傷后可導(dǎo)致其管腔狹窄,相應(yīng)的阻力又會使腎小球?yàn)V過率下降。β2-MG可以從腎小球自由濾過,大部分在近端小管被重吸收,β2-MG明顯升高提示鎘誘導(dǎo)的慢性中毒損傷的主要部位是腎臟的近端小管。總之,以腹腔注射氯化鎘溶液(1.4 mg/kg),每周7次,共4周的大鼠鎘染毒方法,可致大鼠腎臟損傷。

        治療后模型組腎臟質(zhì)量系數(shù)明顯高于丹參酮低、高劑量組,提示STS對腎臟有保護(hù)作用。大鼠禁食禁水24 h,檢測大鼠嚴(yán)重缺水的情況下腎小管的重吸收能力,丹參酮低、高劑量組尿量有所升高,但與空白組相比,其差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示STS對鎘致腎小管損傷有一定的保護(hù)作用。STS治療后丹參酮低、高劑量組Scr、BUN含量,腎皮質(zhì)細(xì)胞凋亡率,提示STS可以有效改善鎘致腎損傷大鼠的腎功能。作為人體中重要的抗氧化酶SOD及其自由基引發(fā)的脂質(zhì)過氧作用的最終分解產(chǎn)物MDA,受STS干預(yù)治療后,低、高劑量組SOD含量明顯上升、MDA明顯下降,提示STS可以有效清除氧自由基。檢測各組大鼠血、腎皮質(zhì)含鎘量,給藥組鎘含量明顯低于模型組,而尿鎘含量未見明顯降低,可能與鎘從腎臟排出進(jìn)入尿液有關(guān),提示STS可以加速大鼠體內(nèi)鎘代謝。STS、亞硒酸鈉干預(yù)鎘致腎損傷大鼠后,結(jié)果顯示,腎臟組織細(xì)胞中Bax蛋白顯著降低,證明STS、亞硒酸鈉干預(yù)鎘致腎毒性有效,但以丹參酮高劑量組效果顯著。

        綜上所述,STS具有較強(qiáng)的清除氧自由基和抗脂質(zhì)氧化作用,并可加速大鼠體內(nèi)鎘代謝、改善腎功能、保護(hù)腎小管,并且丹參酮高劑量組療效優(yōu)于低劑量組和亞硒酸鈉組。STS改善鎘致腎損傷機(jī)制可能與其有效清除氧自由基、抗脂質(zhì)氧化作用有關(guān)。相關(guān)研究提出藥物調(diào)節(jié)Bax、Bcl-2基因表達(dá),也是干預(yù)重金屬致腎損傷的機(jī)制之一[12],尚待進(jìn)一步深入研究。

        [1] Fukumoto M,Kujiraoka T,Hara M,et al.Effect of cadmium on gap junctional intercellular communication in primary cultures of rat renal proximal tubular cells[J].Life Sci,2001,69(3):247-254.

        [2] 毛偉平,許鋒,石曉娟,等.鎘誘導(dǎo)HEK293細(xì)胞胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)的失調(diào)引發(fā)細(xì)胞凋亡[J].中國藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志,2004,18(2):103-108.

        [3] 劉茂生.有害元素鎘與人體健康[J].微量元素與健康研究,2005,22(4):66-67.

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        [5] 余日安.鎘與DNA損傷、癌基因表達(dá)、細(xì)胞凋亡[J].國外醫(yī)學(xué):衛(wèi)生學(xué)分冊,2000,27(6):359-363.

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        The Protective Effect of Tanshinone Ⅱ A Sulfonic Acid Sodium Injection on Cadmium Induced Renal Damage

        WEI Changzheng,LV Xiaoyun,SONG Lianmeng,et al. Institute of Integrated Chinese and Western Medicine,Lanzhou University,Lanzhou,Gansu 730000,China

        Objective:To investigate the protective effect of Tanshinone Ⅱ A sulfonic acid sodium injection(STS)on Cadmium induced renal damage and its possible mechanism.Methods:40 wistar rats were randomly divided into the sham group,model group,sodium selenite group(0.05 mg/kg),STS group(4 mg/kg),STS group(8 mg/kg).After exposed cadmium for 4 weeks,the basic condition of rats,Scr,BUN,SOD,MDA and β2-MG were observed.After the success of the modeling,the sham group and model group were intraperitoneally injected with 0.9%sodium chloride,while the sodium selenite group was intraperitoneally injected with Sodium selenite solution,and the STS group(4 mg/kg and 8 mg/kg)was intraperitoneally injected with different doses of STS.At the end of the test,the Scr,BUN,SOD,MDA in the blood and β2-MG in the urine were detected.The cadmium content in the Renal cortex,blood,urine and Bax were measured.Flow cytometry was used to measure Cell apoptosis in Renal cortex.Results:The basic condition,Scr,BUN,SOD,MDA,β2-MG in different groups had statistical differences.After compared with model group,in the STS group (4 mg/kg and 8 mg/kg)Scr,BUN,β2-MG,cadmium content,MDA,kidney Cell apoptosis and the expression of Bax protein were significantly reduced,and SOD increased significantly.Conclusions:Cadmium induced renal damage can be reduced by the STS group(4 mg/kg and 8 mg/kg).Its protection mechanism may be associated with the antioxidant abitity.

        Tanshinone Ⅱ A sulfonic acid sodium;Cadmium;Kidney damage;Apoptosis;Antioxidant abitity

        R285.5

        A

        1004-745X(2015)06-0984-04

        10.3969/j.issn.1004-745X.2015.06.016

        2015-03-20)

        蘭州市科技發(fā)展項(xiàng)目(No.2012-1-24)

        △通信作者(電子郵箱:776802750@qq.com)

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